目的觀察p21活化激酶4（PAK4）對視網膜血管內皮細胞行為和線粒體功能的影響。方法實驗研究，分為體內動物實驗和體外細胞實驗兩部分。體內動物實驗：健康C57BL/6J雄性小鼠12只，隨機分為正常對照組、糖尿病組，每組各6只小鼠。糖尿病組小鼠經鏈脲佐菌素誘導建立糖尿病模型。建模后8周，采用蛋白質免疫印跡法、實時熒光定量聚合酶鏈反應檢測正常對照組、糖尿病組小鼠視網膜PAK4表達情況。體外細胞實驗：人視網膜微血管內皮細胞（hRMEC）分為常規培養細胞組（N組）、空載體組（Vector組）、PAK4過表達組（PAK4組）。各組加入150 μg/ml糖基化終末產物誘導細胞。細胞劃痕實驗檢測各組hRMEC內細胞遷移情況；流式細胞儀檢測各組白細胞粘附于hRMEC數量。Seahorse XFe96細胞能量代謝分析儀測定細胞內線粒體基礎呼吸、三磷酸腺苷（ATP）生成、最大呼吸與備用呼吸能力。兩組間比較采用t檢驗；三組間比較采用單因素方差分析。結果體內動物實驗：與正常對照組小鼠比較，糖尿病組小鼠視網膜中PAK4 mRNA、蛋白相對表達量顯著升高，差異均有統計學意義（t=25.372、22.419、25.372，P＜0.05）。體外細胞實驗：與N組、Vector組比較，PAK4組hRMEC中PAK4蛋白、mRNA相對表達量和細胞遷移率均顯著升高，差異有統計學意義（F=36.821、38.692、29.421，P＜0.05）。流式細胞儀檢測結果顯示，PAK4組hRMEC上白細胞粘附數量明顯升高，差異有統計學意義（F=39.649，P＜0.01）。線粒體壓力測量結果顯示，PAK4組hRMEC內線粒體基礎呼吸、ATP生成、最大呼吸與備用呼吸能力明顯減弱，差異有統計學意義（F=27.472、22.315、31.147、27.472，P＜0.05）。結論PAK4高表達損傷線粒體功能并顯著促進白細胞粘附和內皮細胞遷移。
目的觀察二甲雙胍（Met）對糖尿病（DM）微環境下人視網膜微血管內皮細胞（hRMEC）中核苷酸結合寡聚化結構樣受體蛋白3（NLRP3）炎癥小體及細胞焦亡的影響。方法實驗研究，分為體內動物實驗和體外細胞實驗進行。體內動物實驗：健康C57BL/6J雄性小鼠9只，隨機分為DM組、正常對照組、DM+Met處理組（DM+Met組），每組各3只小鼠。DM組、DM+Met組小鼠經鏈脲佐菌素誘導建立DM模型；DM+Met組給予Met 400 mg/（kg·d）干預。建模后8周，免疫組織化學染色觀察正常對照組、DM組、DM+Met組小鼠視網膜NLRP3、cleaved-膜穿孔蛋白D（GSDMD）、cleaved-半胱天冬酶1（Caspase-1）的表達。體外細胞實驗：hRMEC分為常規培養細胞組（N組）、晚期糖基化終末產物（AGE）組、AGE+Met組。AGE組、AGE+Met組加入150 μg/ml AGE誘導細胞，AGE+Met組另加入2.0 mmol/L Met處理細胞。流式細胞儀檢測各組細胞焦亡情況；2', 7'-二氯熒光素二乙酸酯（DCFH-DA）熒光探針檢測各組細胞中活性氧（ROS）表達；實時熒光定量聚合酶鏈反應、蛋白質免疫印跡法檢測各組細胞中NLRP3、cleaved-GSDMD、cleaved-Caspase-1 mRNA、蛋白相對表達量。三組間比較采用單因素方差分析。結果體內動物實驗：與DM組比較，正常對照組、DM+Met組小鼠視網膜中NLRP3、cleaved-GSDMD、cleaved-Caspase-1表達顯著降低；三組間比較，差異有統計學意義（F=43.478、36.643、24.464，P＜0.01）。體外細胞實驗：流式細胞儀檢測結果顯示，AGE組細胞焦亡率顯著高于N組、AGE+Met組，差異有統計學意義（F=32.598，P＜0.01）。DCFH-DA檢測結果顯示，N組、AGE+Met組細胞內ROS水平較AGE組明顯降低，差異有統計學意義（F=47.267，P＜0.01）。AGE+Met組細胞中NLRP3、cleaved-GSDMD、cleaved-Caspase-1的mRNA（F=51.563、32.192、44.473，P＜0.01）和蛋白（F=63.372、54.463、48.412，P＜0.01）相對表達量較N組顯著下降。結論Met可下調hRMEC內NLRP3炎性小體相關因子表達并抑制細胞焦亡。
目的觀察聚嘧啶束結合蛋白相關剪接因子（PSF）高表達對高濃度4-羥基壬烯醛（4-HNE）誘導下人視網膜微血管內皮細胞（hRMEC）內質網（ER）氧化應激損傷的保護作用。方法體外培養的對數生長期hRMEC分為正常組、單純4-HNE處理組（單純4-HNE組），空載質粒聯合4-HNE處理組（Vec+4-HNE組）、PSF高表達聯合4-HNE處理組（PSF+ 4-HNE組）。單純4-HNE組、Vec+4-HNE組、PSF+4-HNE組細胞培養基加入10 μmol/L 4-HNE，刺激12 h。其后，Vec+4-HNE組、PSF+4-HNE組應用轉染試劑脂質體2000分別導入pcDNA空載體、pcDNA-PSF真核表達質粒，轉染24 h。正常組細胞常規培養。流式細胞儀檢測各組細胞凋亡率；2'，7'-二氯二氫熒光素雙乙酸鹽探針檢測各組細胞內活性氧（ROS）表達水平。蛋白質免疫印跡法檢測各組細胞內ER氧化物蛋白1（Ero-1）、蛋白質二硫鍵異構酶（PDI）、C/EBP同源轉錄因子（CHOP）、葡萄糖調節蛋白（GRP）78、蛋白激酶R樣ER激酶（pERK）/磷酸化pERK（p-pERK）、真核起始因子（eIF）2α/磷酸化eIF（peIF）、活化轉錄因子4（ATF4）蛋白相對表達量。組間比較行單因素方差分析。結果單純4-HNE組、Vec+4-HNE組、PSF+4-HNE組細胞凋亡率分別為（22.50±0.58）%、（26.93±0.55）%、（11.70±0.17）%；細胞內ROS表達量分別為0.23±0.03、1.60±0.06、0.50±0.06。三組間細胞凋亡率比較，差異有統計學意義（F=24.531，P＜0.05）；Vec+4-HNE組ROS表達水平較單純4-HNE組、PSF+4-HNE組顯著升高，差異有統計學意義（F=37.274，P＜0.05）。正常組、單純4-HNE組、Vec+4-HNE組、PSF+4-HNE組細胞ER中Ero-1、PDI蛋白相對表達量分別為1.25±0.03、0.45±0.03、0.63±0.03、1.13±0.09和1.00±0.10、0.27±0.10、0.31±0.05、0.80±0.06；CHOP、GRP78蛋白相對表達量分別為0.55±0.06、1.13±0.09、0.90±0.06、0.48±0.04和0.48±0.04、1.25±0.03、1.03±0.09、0.50±0.06。4組Ero-1（F=43.164）、PDI（F=36.643）、CHOP（F=42.855）、GRP78（F=45.275）蛋白相對表達量比較，差異均有有統計學意義（P＜0.05）。4組細胞ER p-pERK/pERK（F=35.755）、peIF2α/eIF（F=38.643）、ATF4（F=31.275）蛋白相對表達量比較，差異均有統計學意義（P＜0.05）。結論PSF可抑制高濃度4-HNE誘導的細胞凋亡及ROS產生；其作用機制與恢復ER穩態平衡及下調pERK/eIF2α/ATF4通路的活化水平密切相關。
目的觀察并初步探討骨形成蛋白4（BMP4）靶向調控SMAD9表達對Müller細胞遷移、活性氧（ROS）生成以及血管內皮生長因子（VEGF）表達的影響。方法體外培養的Müller細胞分為正常對照組、BMP4組、BMP4+空載質粒組（BMP4+NC組）、BMP4+SMAD9小干擾質粒組（BMP4+siSMAD9）。BMP4組、BMP4+NC組、BMP4+siSMAD9組細胞培養基加入100 ng/ml BMP4誘導細胞24 h。其后，BMP4+NC組轉染空載質粒；BMP4+siSMAD9組轉染SMAD9小干擾質粒48 h。細胞劃痕實驗測定BMP4對Müller細胞遷移的影響；流式細胞儀檢測BMP4對Müller細胞內ROS生成的影響；蛋白質免疫印跡法（Western blots）、實時熒光定量聚合酶鏈反應（qPCR）檢測Müller細胞內谷氨酰胺合成酶（GS）、膠質纖維酸性蛋白（GFAP）蛋白、mRNA相對表達量；免疫熒光檢測Müller細胞內VEGF的表達。多組間比較采用單因素方差分析。結果細胞劃痕實驗檢測結果顯示，BMP4+ siSMAD9組細胞遷移率較BMP4組、BMP4+NC組顯著降低，差異有統計學意義（F=68.319，P＜0.001）。流式細胞儀檢測結果顯示，BMP4+siSMAD9組細胞內ROS水平較BMP4組、BMP4+NC組顯著降低，差異有統計學意義（F=52.158，P＜0.001）。Western blot、qPCR檢查結果顯示，BMP4+siSMAD9組細胞內GS、GFAP蛋白（F=42.715、36.618）、mRNA相對表達量（F=45.164、43.165）較BMP4組、BMP4+NC組顯著降低，差異有統計學意義（P＜0.01）。免疫熒光檢測結果顯示，BMP4組、BMP4+NC組細胞內VEGF熒光強度較BMP4+siSMAD9組顯著升高，差異有統計學意義（F=46.384，P＜0.05）。結論BMP4靶向調控SMAD9表達，可上調VEGF表達，進而促進Müller細胞遷移及ROS生成。
目的觀察聚嘧啶束結合蛋白相關剪切子（PSF）高表達對低濃度4-羥基壬烯醛（4-HNE）誘導下人視網膜微血管內皮細胞（HRMECs）的影響，初步探討其可能存在的機制。方法將體外培養的對數生長期HRMECs分為4-HNE處理組、PSF高表達聯合4-HNE組（PSF+4-HNE組）、PSF高表達+核因子E2相關因子2（Nrf2）抑制劑（ML385）聯合4-HNE組（PSF+ML385+4-HNE組）、磷酸肌醇3激酶抑制劑LY294002預處理后4-HNE聯合PSF組（LY294002+4-HNE+PSF組）。4-HNE處理組、PSF+4-HNE組、PSF+ML385+4-HNE組細胞培養基加入10 μmmol/L 4-HNE刺激12 h，PSF+4-HNE組、PSF+ML385+4-HNE組應用轉染試劑脂質體2000將1.0 μg pcDNA-PSF真核表達質粒導入細胞中轉染24 h后，PSF+ ML385+ 4-HNE組加入ML385（5 μmol/L）預處理48 h。LY294002+4-HNE+PSF組，除采用LY294002預處理外，4-HNE濃度、刺激時間以及質粒轉染時間同前。Transwell檢測PSF對HRMECs遷移能力的影響；Matrigel體外三維成型法檢測PSF對HRMECs管腔形成的影響；流式細胞儀檢測PSF對HRMECs中活性氧（ROS）水平的影響；蛋白質免疫印跡法（Western blot）檢測PSF、Nrf2、血紅素加氧酶-1（HO-1）蛋白相對表達量以及磷酸化絲氨酸-蘇氨酸蛋白激酶（pAkt）蛋白相對表達量。兩組間比較采用t檢驗。結果4-HNE處理組、PSF+4-HNE組細胞數、遷移細胞數、完整管腔形成數分別為（1.70±0.06）、（0.80±0.13）個，（24.00±0.58）、（10.00±0.67）個和（725.00±5.77）、（318.70±12.13）個。兩組細胞數、遷移細胞數、完整管腔形成數比較，差異均有統計學意義（t=12.311、15.643、17.346，P＜0.001）。流式細胞儀檢測結果顯示，4-HNE處理組、PSF+4-HNE組、PSF+ML385+4-HNE組ROS水平分別為816.70±16.67、416.70±15.44、783.30±17.41；組間兩兩比較，差異均有統計學意義（t=16.311、14.833、18.442，P＜0.001）。Western blot檢測結果顯示，4-HNE處理組、PSF+4-HNE組、LY294002+4-HNE+PSF組HRMECs中pAkt、Nrf2、HO-1蛋白相對表達量分別為0.08±0.01、0.57±0.04、0.35±0.09，0.17±0.03、1.10±0.06、0.08±0.11，0.80±0.14、2.50±0.07、0.50±0.05。與PSF+4-HNE組比較，LY294002+4-HNE+PSF組pAkt、Nrf2、HO-1蛋白相對表達量顯著下降，差異均有統計學意義（t=17.342、16.813、18.794，P＜0.001）。結論PSF高表達通過活化磷酸肌醇3激酶/Akt通路上調HO-1的表達，從而抑制低濃度4-HNE誘導的HRMECs增生遷移和管腔形成。