目的 綜述京尼平作為交聯劑在天然生物材料改性中的應用及研究進展。 方法 查閱近年關于京尼平作為交聯劑在天然生物材料改性中應用的相關文獻，進行分析總結。 結果 天然交聯劑京尼平交聯效率高，細胞毒性顯著低于傳統人工合成的化學交聯劑，交聯后的生物制品穩定性強，抗酶解效果顯著提高。 結論 京尼平有望替代人工合成的傳統化學交聯劑，為組織工程中天然生物材料的交聯改性提供更好的選擇。
目的綜述新型交聯方法在生物衍生材料中的應用與研究進展。 方法查閱近年來國內外生物衍生材料交聯方法的相關文獻，并對其進行總結與分析。 結果生物衍生材料的新型交聯方法可劃分為化學交聯法、物理交聯法和生物交聯法三大類，其適用范圍及交聯性能因交聯機制而異。因此，可根據材料的應用需要選擇最適宜的交聯方法。一系列研究結果表明，交聯后的生物衍生材料可有效應用于組織修復與重建。 結論使用新型交聯方法制備的生物衍生材料具有優良的生物相容性和組織修復能力、更理想的機械性能和降解性能等。這些方法為材料的交聯改性提供更多選擇，有助于得到更適用于臨床的組織工程產品。
目的探討一種用于觀察復合材料多孔結構及組分分布的簡便、快捷病理制片方法。 方法以聚氨酯-小腸黏膜下層（polyurethane/small intestinal submucosa，PU/SIS）復合材料為例，經 OCT 包埋，行冰凍切片，大體觀察切片完整性。切片經水溶性伊紅的醇溶液染色，明場顯微鏡下觀察復合材料上色效果及多孔結構。將染色切片分為 5 組，采用不同封片方式：A 組，甘油明膠濕封；B 組，無水乙醇脫水、TO 型生物透明劑透明、中性快干膠封片；C 組，去離子水浸泡分色、風干、中性快干膠封片；D 組，風干、TO 型生物透明劑透明、中性快干膠封片；E 組，風干、中性快干膠封片。于明場顯微鏡下觀察復合材料形態與兩種組分分布情況，選擇最佳的制片方法。 結果大體觀察制備的 PU/SIS 復合材料冰凍切片厚度均為 6 μm，切片完整連續。明場顯微鏡下觀察示，切片伊紅染色后可觀察到材料清晰輪廓與多孔結構，但無法辨認兩種組分。封片后，A、B、C 組材料組分仍不能辨認或溶解變形；D、E 組材料形狀保持，兩種組分清晰可見。 結論冰凍切片法制備 PU/SIS 復合材料標本，可通過伊紅染色和中性快干膠封片的方法進行材料形態學和組分分布的表征。
目的制備生物醫用聚氨酯微球，對其理化性能及體外生物相容性進行評價。 方法采用自乳化法（乳化速率分別為1 000、2 000、3 000、4 000 r/min）制備聚氨酯微球，采用傅里葉變換紅外光譜儀測試聚氨酯微球的分子結構，掃描電鏡觀察微球內部結構及表面形貌，篩選最佳乳化速率制備的微球進行后續實驗。培養人臍靜脈內皮細胞（human umbilical vein endothelial cells,HUVECs），采用鈣黃綠素/碘化丙啶（calcein-acetoxymethylester/pyridine iodide,Calcein-AM/PI）雙染觀察細胞在聚氨酯材料上的形態及生長黏附情況。分別用含1%苯酚、10% FBS的H-DMEM培養基（A組）、按GB/T 16886.12標準規定比例制備的聚氨酯材料浸提液（B組）、含10% FBS的H-DMEM培養基（C組）培養細胞，采用細胞計數試劑盒8（cell counting kit 8,CCK-8）法評價細胞活力；通過溶血實驗評價血液相容性，其中浸提液作為實驗組，生理鹽水作為陰性對照組，蒸餾水作為陽性對照組。 結果掃描電鏡觀察示，乳化速率為2 000 r/min時制得的微球形態大小均較為理想，聚氨酯涂膜的表面為粗糙致密結構，內部為不均勻的多孔結構。Calcein-AM/PI雙染觀察示HUVECs與聚氨酯材料黏附緊密，且以綠染的活細胞為主。CCK-8檢測示B、C組各時間點細胞增殖活力均顯著高于A組（P＜0.05），材料細胞毒性低。溶血實驗測定示，陽性對照組吸光度（A）值為0.864±0.002，陰性對照組A值為0.015±0.001，聚氨酯微球浸提液的溶血率為0.39%±0.07%（＜5%標準），無溶血作用。 結論通過自乳化法成功制備了球形度較好的聚氨酯微球，該材料有利于細胞黏附增殖、細胞毒性低，且具備良好血液相容性，有望用作軟組織缺損填充材料。