引用本文: 杜威, 杜娟, 周俊, 時國朝, 湯葳. 白細胞介素-25 及其受體對過敏性哮喘患者嗜酸性粒細胞的調控作用. 中國呼吸與危重監護雜志, 2019, 18(3): 247-253. doi: 10.7507/1671-6205.201805012 復制
在過敏性哮喘患者中,嗜酸性粒細胞(eosinophil,Eos)是導致氣道炎癥的主要細胞成分之一[1-2],但在哮喘發生發展中該類細胞的遷移和活化機制仍存在爭議。白細胞介素-25(interleukin-25,IL-25)是屬于 IL-17 家族的促炎因子,具有維持 2 型免疫反應的作用[3],其受體 IL-17RA/RB 由 IL-17RA(信號亞單位)和 IL-17RB(與特定細胞因子結合的亞單位)2 個亞單位構成[4]。在過敏性疾病的動物模型[5-6]和體外試驗[7]中已經基本明確 IL-25 能夠促進 Eos 的聚集和活化,我們既往的研究也已經發現無癥狀的過敏性哮喘患者相比健康人群其體內的成熟 Eos 細胞表面的 IL-17RA 和 IL-17RB 的表達以及血漿 IL-25 的表達均顯著升高[8]。但在哮喘患者急性發作過程中 IL-25 及其受體的作用和表達情況變化目前仍不明確。因此在本研究中,我們測定了哮喘患者在吸入過敏原激發后其外周血 Eos 細胞中 IL-25 及其受體表達的動態變化情況,還探究了 IL-25 對 Eos 細胞的細胞因子生成、脫顆粒和趨化能力的作用,從而更加深入地了解過敏性哮喘中 IL-25 如何引起氣道 Eos 浸潤和炎癥反應。
1 資料與方法
1.1 臨床資料
選擇 2017 年至2018 年門診收治、符合 GINA 支氣管哮喘診斷標準的輕中度過敏性哮喘患者[9],經過知情同意后納入該研究。患者年齡 19~52 歲,未使用過糖皮質激素,僅間斷使用 β2 受體激動劑治療,且均不吸煙,以排除吸煙和糖皮質激素治療對疾病診斷和試驗結果的影響[8-9]。同時患者皮膚點刺試驗中至少一種吸入過敏原陽性(點刺試驗陽性指出現 2 mm×2 mm 的風團且組胺反應陽性而溶劑反應陰性),從而保證后續試驗的進行且進一步證實患者為過敏性哮喘[8-9]。該研究通過研究者所在單位倫理委員會審查批準。
1.2 方法
1.2.1 過敏原及溶劑吸入激發反應
過敏原激發試驗按照既往研究中的描述進行[10]。該研究是一項隨機對照交叉試驗,以過敏原為試驗組,過敏原溶劑作為對照組。其中用于試驗的吸入過敏原選擇在點刺試驗中導致最大風團的過敏原或在臨床病史中暴露后出現哮喘癥狀的過敏原。受試者于激發前后采集外周血以進行后續實驗。
1.2.2 細胞標本準備和免疫熒光染色
采集患者全血至乙二胺四乙酸管中,裂解液裂解紅細胞,熒光激活細胞分選儀(fluorescence activated cell sorter,FACS)緩沖液[磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer solution,PBS)中加入 0.1% 的疊氮化鈉和 0.5% 的牛血清白蛋白中重懸白細胞]。為了檢測 Eos 表面的 IL-25 受體表達情況,細胞通過 V450-CD45、APC-CD16、FITC-IL-17RA、PE-IL-17RB 或 FITC-IgG1,以及 PE-IgG2B 等抗體進行標記。為了檢測胞內細胞因子表達水平,細胞首先通過 V450-CD45 和 APC-CD16(或 V450-CD3、Alexa Fluor 700-CD4 和 APC-CRTH2)進行預染色并在 4% 多聚甲醛中重懸 10 min,緩沖液洗滌 2 次后以皂苷緩沖液破膜(Hanks 平衡鹽緩沖液中加入 1% 皂苷和 0.05% NaN3),再通過 FITC 標記的 IL-25 或 IgG1 同型對照抗體標記染色(20 ℃ 下 30 min),然后再加入 1% 多聚甲醛并送流式細胞檢測。所用抗體均購自美國 R&D Systems 公司。
1.2.3 檢測血漿 IL-25 水平
血漿 IL-25 的表達水平通過購買的酶聯免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(美國 Peprotech 公司)進行檢測,方法參考文獻[8, 11]。
1.2.4 Eos 脫顆粒分析
即 Eos 過氧化物酶檢測。過敏性哮喘患者外周血(100 ml)經過 AccuPrep 分層后采集粒細胞層并通過磁珠分選出 Eos(美國 Miltenyi Biotech 公司)。分選出的細胞純度>95%,存活率>90%。這些細胞在 24 孔板(1×106/ml)中進行培養(RPMI 培養基)并分為加入和不加入 IL-25(1 ng/ml;R&D Systems)處理細胞,在分析結束前 2 h 進行處理。細胞處理后再在 1% 多聚甲醛中重懸,取上清液通過 ELISA 法檢測 Eos 過氧化物酶含量(美國 Cloud Clone 公司)。
1.2.5 IL-25 刺激 Th2 型細胞因子表達
Eos 進行富集后培養于 24 孔板中(1×106/ml),并加入 IL-25 或空白對照試劑 18 h。細胞培養結束前 6 h 加入高爾基體拮抗劑莫能霉素(美國 BioLegend 公司)。細胞活性通過臺盼藍染色進行檢測。細胞培養結束后采集細胞樣本并通過前述免疫染色及流式細胞方法檢測胞內細胞因子表達情況。在該過程中,Eos 純度應>95%,活性>90%。
1.2.6 成熟 Eos 的趨化能力
行跨膜移行試驗。Eos 純化后在 RPMI 培養液中培養 2 h,并在其中加入 1 pg/ml 的 IL-25 或溶劑。細胞趨化能力通過 48 孔 Boyden 小室進行評估,方法參考文獻[12]。嗜酸性粒細胞趨化因子(eotaxin,1 nmol/L,美國 R&D Systems 公司)加至下方小室,而 Eos(3×106/ml)加入上方小室。通過隨機選取 10 個 40 倍光鏡下視野進行計數,從而得出 Eos 數目。
1.2.7 流式細胞術
細胞以 LSR II 流式細胞儀(美國 Becton Dickinson 儀器系統)進行檢測,并以 FACSDiva 軟件程序(美國 Becton Dickinson 生物公司)獲取數據。設門策略參考文獻[8]。數據分析采用 FlowJo 9.3.2(美國 Tree Star 公司)軟件,從而獲得 IL-25 受體及細胞內 IL-25 的表達水平。
1.3 統計學方法
數據分析使用 Graphpad Prism 5 軟件(Graphpad Software Inc.,美國)。正態分布數據采用均數±標準誤(±SEM)表示。使 第 1 秒用力呼氣容積(forced expiratory volume in onesecond,FEV1)下降 20% 所需乙酰膽堿濃度(PC20)采用幾何均數和幾何標準誤進行表示。對于 IL-25 受體在 Eos 表面的表達差異以及其他所有體外試驗數據,主要通過重復測量方差分析(analysis of variance,ANOVA)方法進行數據分析。兩兩比較采用 Tukey 多組比較方法。P<0.05 為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 氣道生理和氣道炎癥
共納入 15 例患者。患者皮膚點刺試驗均陽性,FEV1 占預計值百分比(FEV1%pred)≥70%。在吸入過敏原后患者都出現了雙相氣道反應,即在吸入后 3 h 內 FEV1 下降≥20%(速發相哮喘反應),而在吸入后 3~7 h FEV1 再次下降≥15%(遲發相哮喘反應)。受試者的基線指標見表 1。相比于吸入溶劑,吸入過敏原的患者無論在哮喘的速發相反應和遲發相反應中均存在 FEV1 的顯著下降(表 2)。而患者在使用過敏原激發后 24 h 會出現 PC20 的顯著降低和痰 Eos 的顯著增高(表 2)。此外,激發后 24 h 患者外周血成熟 Eos 絕對數目顯著上升[(38±6)×103/ml 和(64±9)×103/ml,基線水平和激發后,P<0.05,表 2]。


2.2 過敏原誘導 IL-25 受體表達水平改變
在過敏原激發后 24 h,外周血中表達 IL-17RB[(7 426±2 824)/106 白細胞和(19 446±5 593)/106 白細胞,激發前和激發后,P<0.01]和 IL-17RA/RB[(4 508±1 360)/106 白細胞和(9 025±3 166)/106 白細胞,P<0.001]的成熟 Eos 數目顯著增多(圖 1),而 IL-17RA 的表達無此變化。

a、b、c 分別代表 IL-17RA 陽性、IL-17RB 和 IL-17RA/RB 陽性 Eos 數目。過敏原激發后 IL-17RB 陽性和 IL-17RA/RB 陽性外周血 Eos 數目顯著增加。水平線表示均數。*過敏原組激發前后對比,
2.3 過敏原誘導血漿和細胞內 IL-25 表達水平的改變
激發后 7 h 和 24 h,血漿 IL-25 的水平均有顯著上升[(激發前,(650±45)pg/ml;激發后 7 h,(851±43)pg/ml,P<0.001(相比激發前);激發后 24 h,(813±56)pg/ml,P<0.001(相比激發前)]。此外,激發后 24 h 外周血 Eos 胞內表達 IL-25 的數目顯著增加[(10 398±1 909)/106 白細胞和(147 684±46 222)/106 白細胞,激發前和激發后,P<0.05]。結果見圖 2。

a. 血漿 IL-25 的水平,激發后 7 h 和 24 h 均有顯著上升;b. 外周血 IL-25 陽性的 Eos 數目,激發后 24 h 外周血 Eos 胞內表達 IL-25 的數目顯著增加。*激發前后對比,
2.4 IL-25 引起成熟 Eos 脫顆粒改變
6 例患者測定了 IL-25 引起成熟 Eos 脫顆粒改變。1 ng/ml 的 IL-25 持續刺激 2 h 能夠顯著增加成熟 Eos 釋放過氧化物酶[(1.26±0.40)和(12.5±4.20)ng/ml,對照組和 IL-25 組,P<0.05]。結果見圖 3。

2.5 IL-25 誘導 Th2 型細胞因子在 Eos 中的胞內表達改變
5 例患者測定了 IL-25 誘導 Th2 型細胞因子在 Eos 中的胞內表達改變。Eos 在 IL-25 刺激(18 h,理想濃度在 1 ng/ml 和 10 ng/ml)后胞內表達 IL-5 和 IL-13 的水平顯著上升。結果見圖 4a 和4b。

a. IL-5 陽性 Eos 比例;b. IL-13 陽性 Eos 比例
2.6 體外試驗中 IL-25 能夠促進 Eos 的趨化反應
7 例患者測定了體外試驗中 IL-25 對 Eos 趨化反應的影響。在體外試驗中較大濃度范圍內的 IL-25(1~1 000 pg/ml)對成熟 Eos 進行直接刺激并不能增強其遷移能力。但是如果使用低濃度 IL-25(1 pg/ml)對成熟 Eos 進行預處理則能夠顯著增強這些細胞隨后對 eotaxin(1 nmol/L)的趨化反應(36±3 比 69±5,P<0.05)。結果見圖 5。

體外試驗中 IL-25 的預處理能夠促進 Eos 對 eotaxin 的趨化作用。*相比空白對照組,
3 討論
本研究發現在具有雙相反應的哮喘患者中,吸入過敏原后外周血 IL-25 表達水平和成熟 Eos 表面 IL-25 受體表達均顯著增加。此外,激發后 24 h 外周血 Eos 胞內 IL-25 對的表達亦有所增加。通過檢測過氧化物酶的釋放情況,我們還發現,相對高濃度的 IL-25(1 000 pg/ml)可短時刺激成熟 Eos 脫顆粒。而 IL-25(100~1 000 pg/ml)的持續刺激(過夜)能夠促進 Eos 胞內 2 型細胞因子表達。而在體外試驗中,我們還發現低濃度 IL-25(1 pg/ml)能夠促進 Eos 對 eotaxin 的趨化作用。通過人體研究和體外實驗我們從多個層面發現 Eos 通過增加其表面 IL-25 受體的表達而對 IL-25 更加敏感,從而在過敏性哮喘患者中增強了過敏原暴露后氣道中炎癥細胞尤其是 Eos 的募集和促炎因子的產生。
IL-25 是哮喘發生發展中的重要促炎因子。既往研究表明它能夠促進 2 型細胞炎癥并促進哮喘的發生發展[5-7]。而對于 Eos,IL-25 通過上調細胞間黏附分子-1 的表達能夠直接激活 Eos,并促進單核細胞趨化因子-1、IL-8、巨噬細胞炎癥蛋白-1 和 IL-6 的釋放,且能夠延遲 Eos 的凋亡[13-14]。IL-25 的生物作用主要通過與 IL-25 受體結合而實現,后者由 IL-17RA 和 IL-17RB 組成并形成 IL-25 的功能性受體 IL-17RA/IL-17RB[15],且 IL-25 與 IL-17RB 具有高度親和性[16, 21]。既往研究中我們已經發現過敏性哮喘患者相比正常人或過敏體質者其體內 Eos 的 IL-25 受體表達顯著升高[8]。在該項研究中我們進一步發現過敏原激發后哮喘患者外周血 Eos 表面 IL-17RB 和 IL-17RA/IL-17RB 的表達顯著升高。該結果與國外研究者的試驗結果一致。他們在研究中發現過敏原激發后哮喘患者支氣管黏膜的 IL-25 及其受體的表達均會上升,而在該過程中 Eos 具有重要作用[17]。還有研究顯示 Eos 是 IL-25 的重要來源[11],而在我們的研究中也發現過敏原激發后 Eos 胞內 IL-25 的表達明顯增加。這些結果均提示在過敏反應中 Eos 能夠動態釋放 IL-25。
既往研究已經發現過敏性哮喘患者血漿 IL-25 水平相比正常人顯著增加[8, 18]。而在此次研究中,我們發現在吸入過敏原后哮喘患者血漿 IL-25 水平能夠明顯增加。盡管血漿 IL-25 水平的增加與該項研究中 Eos 表面 IL-17RB 或 IL-17RA 的表達并不相關,但是由于 IL-25 曾被發現能夠上調 Eos 表面 IL-17RB 的表達[14],因此這能夠部分解釋 Eos 表面 IL-17RB 表達的增加。在此次研究的預試驗中,痰液上清的 IL-25 水平并不能通過 ELISA 檢測到,這可能是由于處理痰液過程中加入試劑的蛋白分解作用。但是由于最近的研究顯示過敏性哮喘患者中血漿 IL-25 水平和氣道上皮 IL-25 的表達密切相關[18],因此血漿 IL-25 水平也能側面反映氣道 IL-25 的表達情況。此外,血漿 IL-25 高表達與氣道嗜酸性粒細胞性炎癥、肺功能異常和氣道高反應性均密切相關,也顯示了過敏性哮喘的發病過程中 IL-25 的重要作用。
成熟 Eos 是顆粒蛋白如 EPX、MPB 和 EPO 的重要來源,而這些顆粒蛋白均能夠導致氣道上皮損傷,Eos 還是 2 型細胞因子的重要來源,從而進一步促進哮喘患者的炎癥產生[19]。我們的研究結果顯示 IL-25 能夠直接刺激 Eos 釋放過氧化物酶和增加 IL-5 及 IL-13 的表達。此外,我們還發現盡管 IL-25 不能直接促進趨化反應,但 IL-25 預處理后的 Eos 對強趨化因子如 Eotaxin 的趨化作用顯著增強。因此,我們推測在過敏性炎癥反應中,Eos 活化后 IL-25 的自分泌增加,從而使 Eos 在 IL-25 低濃度時表現出趨化反應增強,在 IL-25 高濃度時出現脫顆粒反應。
當然,該研究仍然存在一定的不足。首先,人體研究中樣本量仍較少,且部分數據存在缺失,雖然通過研究設計和數據分析充分使用能夠獲得的樣本數據,其外推性仍不足,需要進一步的研究驗證,其次,在細胞實驗中由于相關抗體未能獲得,IL-25/IL-25 受體途徑的作用未能夠得到充分探究,這可能需要在后續研究中補充和深入。
總之,我們的研究結果顯示在哮喘患者中,過敏原誘發的氣道反應與 IL-25 息息相關,該過程可能是通過促進 Eos 的聚集和增強其效應功能而發生。因此拮抗 IL-25 的作用很可能能夠減輕哮喘患者過敏原誘發的氣道嗜酸性粒細胞性炎癥反應,并成為新的哮喘治療手段。
在過敏性哮喘患者中,嗜酸性粒細胞(eosinophil,Eos)是導致氣道炎癥的主要細胞成分之一[1-2],但在哮喘發生發展中該類細胞的遷移和活化機制仍存在爭議。白細胞介素-25(interleukin-25,IL-25)是屬于 IL-17 家族的促炎因子,具有維持 2 型免疫反應的作用[3],其受體 IL-17RA/RB 由 IL-17RA(信號亞單位)和 IL-17RB(與特定細胞因子結合的亞單位)2 個亞單位構成[4]。在過敏性疾病的動物模型[5-6]和體外試驗[7]中已經基本明確 IL-25 能夠促進 Eos 的聚集和活化,我們既往的研究也已經發現無癥狀的過敏性哮喘患者相比健康人群其體內的成熟 Eos 細胞表面的 IL-17RA 和 IL-17RB 的表達以及血漿 IL-25 的表達均顯著升高[8]。但在哮喘患者急性發作過程中 IL-25 及其受體的作用和表達情況變化目前仍不明確。因此在本研究中,我們測定了哮喘患者在吸入過敏原激發后其外周血 Eos 細胞中 IL-25 及其受體表達的動態變化情況,還探究了 IL-25 對 Eos 細胞的細胞因子生成、脫顆粒和趨化能力的作用,從而更加深入地了解過敏性哮喘中 IL-25 如何引起氣道 Eos 浸潤和炎癥反應。
1 資料與方法
1.1 臨床資料
選擇 2017 年至2018 年門診收治、符合 GINA 支氣管哮喘診斷標準的輕中度過敏性哮喘患者[9],經過知情同意后納入該研究。患者年齡 19~52 歲,未使用過糖皮質激素,僅間斷使用 β2 受體激動劑治療,且均不吸煙,以排除吸煙和糖皮質激素治療對疾病診斷和試驗結果的影響[8-9]。同時患者皮膚點刺試驗中至少一種吸入過敏原陽性(點刺試驗陽性指出現 2 mm×2 mm 的風團且組胺反應陽性而溶劑反應陰性),從而保證后續試驗的進行且進一步證實患者為過敏性哮喘[8-9]。該研究通過研究者所在單位倫理委員會審查批準。
1.2 方法
1.2.1 過敏原及溶劑吸入激發反應
過敏原激發試驗按照既往研究中的描述進行[10]。該研究是一項隨機對照交叉試驗,以過敏原為試驗組,過敏原溶劑作為對照組。其中用于試驗的吸入過敏原選擇在點刺試驗中導致最大風團的過敏原或在臨床病史中暴露后出現哮喘癥狀的過敏原。受試者于激發前后采集外周血以進行后續實驗。
1.2.2 細胞標本準備和免疫熒光染色
采集患者全血至乙二胺四乙酸管中,裂解液裂解紅細胞,熒光激活細胞分選儀(fluorescence activated cell sorter,FACS)緩沖液[磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer solution,PBS)中加入 0.1% 的疊氮化鈉和 0.5% 的牛血清白蛋白中重懸白細胞]。為了檢測 Eos 表面的 IL-25 受體表達情況,細胞通過 V450-CD45、APC-CD16、FITC-IL-17RA、PE-IL-17RB 或 FITC-IgG1,以及 PE-IgG2B 等抗體進行標記。為了檢測胞內細胞因子表達水平,細胞首先通過 V450-CD45 和 APC-CD16(或 V450-CD3、Alexa Fluor 700-CD4 和 APC-CRTH2)進行預染色并在 4% 多聚甲醛中重懸 10 min,緩沖液洗滌 2 次后以皂苷緩沖液破膜(Hanks 平衡鹽緩沖液中加入 1% 皂苷和 0.05% NaN3),再通過 FITC 標記的 IL-25 或 IgG1 同型對照抗體標記染色(20 ℃ 下 30 min),然后再加入 1% 多聚甲醛并送流式細胞檢測。所用抗體均購自美國 R&D Systems 公司。
1.2.3 檢測血漿 IL-25 水平
血漿 IL-25 的表達水平通過購買的酶聯免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(美國 Peprotech 公司)進行檢測,方法參考文獻[8, 11]。
1.2.4 Eos 脫顆粒分析
即 Eos 過氧化物酶檢測。過敏性哮喘患者外周血(100 ml)經過 AccuPrep 分層后采集粒細胞層并通過磁珠分選出 Eos(美國 Miltenyi Biotech 公司)。分選出的細胞純度>95%,存活率>90%。這些細胞在 24 孔板(1×106/ml)中進行培養(RPMI 培養基)并分為加入和不加入 IL-25(1 ng/ml;R&D Systems)處理細胞,在分析結束前 2 h 進行處理。細胞處理后再在 1% 多聚甲醛中重懸,取上清液通過 ELISA 法檢測 Eos 過氧化物酶含量(美國 Cloud Clone 公司)。
1.2.5 IL-25 刺激 Th2 型細胞因子表達
Eos 進行富集后培養于 24 孔板中(1×106/ml),并加入 IL-25 或空白對照試劑 18 h。細胞培養結束前 6 h 加入高爾基體拮抗劑莫能霉素(美國 BioLegend 公司)。細胞活性通過臺盼藍染色進行檢測。細胞培養結束后采集細胞樣本并通過前述免疫染色及流式細胞方法檢測胞內細胞因子表達情況。在該過程中,Eos 純度應>95%,活性>90%。
1.2.6 成熟 Eos 的趨化能力
行跨膜移行試驗。Eos 純化后在 RPMI 培養液中培養 2 h,并在其中加入 1 pg/ml 的 IL-25 或溶劑。細胞趨化能力通過 48 孔 Boyden 小室進行評估,方法參考文獻[12]。嗜酸性粒細胞趨化因子(eotaxin,1 nmol/L,美國 R&D Systems 公司)加至下方小室,而 Eos(3×106/ml)加入上方小室。通過隨機選取 10 個 40 倍光鏡下視野進行計數,從而得出 Eos 數目。
1.2.7 流式細胞術
細胞以 LSR II 流式細胞儀(美國 Becton Dickinson 儀器系統)進行檢測,并以 FACSDiva 軟件程序(美國 Becton Dickinson 生物公司)獲取數據。設門策略參考文獻[8]。數據分析采用 FlowJo 9.3.2(美國 Tree Star 公司)軟件,從而獲得 IL-25 受體及細胞內 IL-25 的表達水平。
1.3 統計學方法
數據分析使用 Graphpad Prism 5 軟件(Graphpad Software Inc.,美國)。正態分布數據采用均數±標準誤(±SEM)表示。使 第 1 秒用力呼氣容積(forced expiratory volume in onesecond,FEV1)下降 20% 所需乙酰膽堿濃度(PC20)采用幾何均數和幾何標準誤進行表示。對于 IL-25 受體在 Eos 表面的表達差異以及其他所有體外試驗數據,主要通過重復測量方差分析(analysis of variance,ANOVA)方法進行數據分析。兩兩比較采用 Tukey 多組比較方法。P<0.05 為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 氣道生理和氣道炎癥
共納入 15 例患者。患者皮膚點刺試驗均陽性,FEV1 占預計值百分比(FEV1%pred)≥70%。在吸入過敏原后患者都出現了雙相氣道反應,即在吸入后 3 h 內 FEV1 下降≥20%(速發相哮喘反應),而在吸入后 3~7 h FEV1 再次下降≥15%(遲發相哮喘反應)。受試者的基線指標見表 1。相比于吸入溶劑,吸入過敏原的患者無論在哮喘的速發相反應和遲發相反應中均存在 FEV1 的顯著下降(表 2)。而患者在使用過敏原激發后 24 h 會出現 PC20 的顯著降低和痰 Eos 的顯著增高(表 2)。此外,激發后 24 h 患者外周血成熟 Eos 絕對數目顯著上升[(38±6)×103/ml 和(64±9)×103/ml,基線水平和激發后,P<0.05,表 2]。


2.2 過敏原誘導 IL-25 受體表達水平改變
在過敏原激發后 24 h,外周血中表達 IL-17RB[(7 426±2 824)/106 白細胞和(19 446±5 593)/106 白細胞,激發前和激發后,P<0.01]和 IL-17RA/RB[(4 508±1 360)/106 白細胞和(9 025±3 166)/106 白細胞,P<0.001]的成熟 Eos 數目顯著增多(圖 1),而 IL-17RA 的表達無此變化。

a、b、c 分別代表 IL-17RA 陽性、IL-17RB 和 IL-17RA/RB 陽性 Eos 數目。過敏原激發后 IL-17RB 陽性和 IL-17RA/RB 陽性外周血 Eos 數目顯著增加。水平線表示均數。*過敏原組激發前后對比,
2.3 過敏原誘導血漿和細胞內 IL-25 表達水平的改變
激發后 7 h 和 24 h,血漿 IL-25 的水平均有顯著上升[(激發前,(650±45)pg/ml;激發后 7 h,(851±43)pg/ml,P<0.001(相比激發前);激發后 24 h,(813±56)pg/ml,P<0.001(相比激發前)]。此外,激發后 24 h 外周血 Eos 胞內表達 IL-25 的數目顯著增加[(10 398±1 909)/106 白細胞和(147 684±46 222)/106 白細胞,激發前和激發后,P<0.05]。結果見圖 2。

a. 血漿 IL-25 的水平,激發后 7 h 和 24 h 均有顯著上升;b. 外周血 IL-25 陽性的 Eos 數目,激發后 24 h 外周血 Eos 胞內表達 IL-25 的數目顯著增加。*激發前后對比,
2.4 IL-25 引起成熟 Eos 脫顆粒改變
6 例患者測定了 IL-25 引起成熟 Eos 脫顆粒改變。1 ng/ml 的 IL-25 持續刺激 2 h 能夠顯著增加成熟 Eos 釋放過氧化物酶[(1.26±0.40)和(12.5±4.20)ng/ml,對照組和 IL-25 組,P<0.05]。結果見圖 3。

2.5 IL-25 誘導 Th2 型細胞因子在 Eos 中的胞內表達改變
5 例患者測定了 IL-25 誘導 Th2 型細胞因子在 Eos 中的胞內表達改變。Eos 在 IL-25 刺激(18 h,理想濃度在 1 ng/ml 和 10 ng/ml)后胞內表達 IL-5 和 IL-13 的水平顯著上升。結果見圖 4a 和4b。

a. IL-5 陽性 Eos 比例;b. IL-13 陽性 Eos 比例
2.6 體外試驗中 IL-25 能夠促進 Eos 的趨化反應
7 例患者測定了體外試驗中 IL-25 對 Eos 趨化反應的影響。在體外試驗中較大濃度范圍內的 IL-25(1~1 000 pg/ml)對成熟 Eos 進行直接刺激并不能增強其遷移能力。但是如果使用低濃度 IL-25(1 pg/ml)對成熟 Eos 進行預處理則能夠顯著增強這些細胞隨后對 eotaxin(1 nmol/L)的趨化反應(36±3 比 69±5,P<0.05)。結果見圖 5。

體外試驗中 IL-25 的預處理能夠促進 Eos 對 eotaxin 的趨化作用。*相比空白對照組,
3 討論
本研究發現在具有雙相反應的哮喘患者中,吸入過敏原后外周血 IL-25 表達水平和成熟 Eos 表面 IL-25 受體表達均顯著增加。此外,激發后 24 h 外周血 Eos 胞內 IL-25 對的表達亦有所增加。通過檢測過氧化物酶的釋放情況,我們還發現,相對高濃度的 IL-25(1 000 pg/ml)可短時刺激成熟 Eos 脫顆粒。而 IL-25(100~1 000 pg/ml)的持續刺激(過夜)能夠促進 Eos 胞內 2 型細胞因子表達。而在體外試驗中,我們還發現低濃度 IL-25(1 pg/ml)能夠促進 Eos 對 eotaxin 的趨化作用。通過人體研究和體外實驗我們從多個層面發現 Eos 通過增加其表面 IL-25 受體的表達而對 IL-25 更加敏感,從而在過敏性哮喘患者中增強了過敏原暴露后氣道中炎癥細胞尤其是 Eos 的募集和促炎因子的產生。
IL-25 是哮喘發生發展中的重要促炎因子。既往研究表明它能夠促進 2 型細胞炎癥并促進哮喘的發生發展[5-7]。而對于 Eos,IL-25 通過上調細胞間黏附分子-1 的表達能夠直接激活 Eos,并促進單核細胞趨化因子-1、IL-8、巨噬細胞炎癥蛋白-1 和 IL-6 的釋放,且能夠延遲 Eos 的凋亡[13-14]。IL-25 的生物作用主要通過與 IL-25 受體結合而實現,后者由 IL-17RA 和 IL-17RB 組成并形成 IL-25 的功能性受體 IL-17RA/IL-17RB[15],且 IL-25 與 IL-17RB 具有高度親和性[16, 21]。既往研究中我們已經發現過敏性哮喘患者相比正常人或過敏體質者其體內 Eos 的 IL-25 受體表達顯著升高[8]。在該項研究中我們進一步發現過敏原激發后哮喘患者外周血 Eos 表面 IL-17RB 和 IL-17RA/IL-17RB 的表達顯著升高。該結果與國外研究者的試驗結果一致。他們在研究中發現過敏原激發后哮喘患者支氣管黏膜的 IL-25 及其受體的表達均會上升,而在該過程中 Eos 具有重要作用[17]。還有研究顯示 Eos 是 IL-25 的重要來源[11],而在我們的研究中也發現過敏原激發后 Eos 胞內 IL-25 的表達明顯增加。這些結果均提示在過敏反應中 Eos 能夠動態釋放 IL-25。
既往研究已經發現過敏性哮喘患者血漿 IL-25 水平相比正常人顯著增加[8, 18]。而在此次研究中,我們發現在吸入過敏原后哮喘患者血漿 IL-25 水平能夠明顯增加。盡管血漿 IL-25 水平的增加與該項研究中 Eos 表面 IL-17RB 或 IL-17RA 的表達并不相關,但是由于 IL-25 曾被發現能夠上調 Eos 表面 IL-17RB 的表達[14],因此這能夠部分解釋 Eos 表面 IL-17RB 表達的增加。在此次研究的預試驗中,痰液上清的 IL-25 水平并不能通過 ELISA 檢測到,這可能是由于處理痰液過程中加入試劑的蛋白分解作用。但是由于最近的研究顯示過敏性哮喘患者中血漿 IL-25 水平和氣道上皮 IL-25 的表達密切相關[18],因此血漿 IL-25 水平也能側面反映氣道 IL-25 的表達情況。此外,血漿 IL-25 高表達與氣道嗜酸性粒細胞性炎癥、肺功能異常和氣道高反應性均密切相關,也顯示了過敏性哮喘的發病過程中 IL-25 的重要作用。
成熟 Eos 是顆粒蛋白如 EPX、MPB 和 EPO 的重要來源,而這些顆粒蛋白均能夠導致氣道上皮損傷,Eos 還是 2 型細胞因子的重要來源,從而進一步促進哮喘患者的炎癥產生[19]。我們的研究結果顯示 IL-25 能夠直接刺激 Eos 釋放過氧化物酶和增加 IL-5 及 IL-13 的表達。此外,我們還發現盡管 IL-25 不能直接促進趨化反應,但 IL-25 預處理后的 Eos 對強趨化因子如 Eotaxin 的趨化作用顯著增強。因此,我們推測在過敏性炎癥反應中,Eos 活化后 IL-25 的自分泌增加,從而使 Eos 在 IL-25 低濃度時表現出趨化反應增強,在 IL-25 高濃度時出現脫顆粒反應。
當然,該研究仍然存在一定的不足。首先,人體研究中樣本量仍較少,且部分數據存在缺失,雖然通過研究設計和數據分析充分使用能夠獲得的樣本數據,其外推性仍不足,需要進一步的研究驗證,其次,在細胞實驗中由于相關抗體未能獲得,IL-25/IL-25 受體途徑的作用未能夠得到充分探究,這可能需要在后續研究中補充和深入。
總之,我們的研究結果顯示在哮喘患者中,過敏原誘發的氣道反應與 IL-25 息息相關,該過程可能是通過促進 Eos 的聚集和增強其效應功能而發生。因此拮抗 IL-25 的作用很可能能夠減輕哮喘患者過敏原誘發的氣道嗜酸性粒細胞性炎癥反應,并成為新的哮喘治療手段。