引用本文: 郭凱, 閆小龍, 張志培, 韓璐, 范亮波, 同李平, 張勇, 李小飛. 198例手術切除的非小細胞肺癌患者應用ARMS法檢測血漿表皮生長因子受體突變. 中國胸心血管外科臨床雜志, 2016, 23(6): 602-607. doi: 10.7507/1007-4848.20160143 復制
肺癌(lung cancer)是發病率和死亡率最高的惡性腫瘤之一[1]。肺癌中80%~90%為非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)[2]。近年來,盡管肺癌的診斷及手術、化療、放療等綜合治療手段不斷改進,但肺癌患者的預后并無明顯改善[3]。靶向藥物的應用大大延長了部分患者生存時間,代表性靶向藥物是酪氨酸激酶抑制劑(TKI)。多項臨床研究證實EGFR突變患者服用TKI藥物可有效提高無進展生存期(PFS)和總生存期(OS)[4-6]。
組織檢測EGFR突變是評估患者對TKI藥物療效的金標準,但臨床上并不是每例患者都能取得組織標本用于檢測[7]。因此,使用其他標本代替組織進行EGFR突變檢測成為目前研究的熱點,諸如胸腔積液[8]、血漿或血清等。血液檢測EGFR突變是一種非侵入性的,代替組織標本動態監測患者基因信息的方法,方便臨床上對患者做出診斷,同時對服用TKI藥物的患者,還可以在后續病程中對其進行EGFR耐藥監控。cfDNA中EGFR突變情況的動態變化,可以有效預測服用TKI藥物患者的臨床預后[9]。
此前一系列的研究表明對進展期NSCLC使用血漿檢測EGFR突變是可行的。但各研究的敏感性差異較大,對于早期NSCLC的血漿EGFR突變檢測研究很少,研究方法缺乏標準性[10-13]。因而,用其結果來評估早期血漿檢測的敏感性的可靠性有限。
本文采用ARMS法檢測早期NSCLC患者血漿EGFR突變,并通過分析血漿檢測敏感性與患者特征的關系,確定可使用血漿進行基因診斷,EGFR動態監控早期NSCLC患者。同時對ⅢA期患者進行術后隨訪,探討血漿EGFR突變檢測對預測NSCLC患者術后生存預后的價值。
1 材料與方法
1.1 材料
收集2014年2月至2015年6月期間第四軍醫大學唐都醫院胸腔外科手術切除新鮮NSCLC腫瘤組織(術前均未行放療、化療及靶向治療)。研究實施前,所有患者均已簽署知情同意書。
1.1.1 組織標本
所有組織均來源于唐都醫院胸腔外科手術切除標本。組織標本均經過唐都醫院病理科確診為非小細胞肺癌。部分Ⅳ期患者為單發腦轉移或腎上腺轉移,有手術切除指征,其余Ⅳ期患者手術只為獲取組織進行病理診斷。
1.1.2 血漿標本采集
于非小細胞肺癌患者手術前1 d抽取全血5 ml,置于乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝管,并在抽取后4 h內處理血液。于3 000 r/min離心15 min,2 ml上清即血漿移到無菌離心管,凍存于-80℃。選取198例經組織檢測證實有EGFR突變的NSCLC患者血漿標本作為研究對象。其中男86例、女112例,年齡36~78歲,吸煙52例,不吸煙146例(不吸煙定義為一生吸煙少于100支)。腺癌183例、鱗癌8例、腺鱗癌4例,其他類型3例,包括大細胞癌,肉瘤樣癌,細支氣管肺泡癌。分化程度為高分化45例,中分化108例,低分化38例,不確定7例;根據2014 NCCN非小細胞肺癌指南TNM分期標準,ⅠA期62例,ⅠB期38例,ⅡA期18例,ⅡB期5例,ⅢA期60例,ⅢB期3例,Ⅳ期12例。
1.2 方法
1.2.1 血漿DNA的提取
采用艾德血漿/血清DNA提取試劑盒(廈門艾德公司)按照操作說明提取血漿cfDNA,提取的cfDNA濃度和純度由Beckman Coulter DU800紫外分光光度儀測定。提取的DNA儲存于-20 ℃備用。
1.2.2 實時定量熒光PCR分析血漿EGFR突變
ARMS法具有高敏感度和檢測快速的優點,可以檢測到低至1%的突變。45 μl提取的cfDNA被用于EGFR突變檢測。按照艾德EGFR突變檢測試劑盒(廈門艾德公司)操作說明書步驟,應用實時定量PCR儀 (Agilent StrataGene Mx3000P,USA)檢測EGFR突變。PCR過程包括三個階段,第一階段包括1個循環(95 ℃,5 min),第二階段95 ℃ 25 s,64 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s共15個循環,第三階段93 ℃ 25 s,60 ℃ 35 s,72 ℃ 20 s,共31個循環。檢測結果由兩位專業的研究人員判讀和分析。如果判讀結果不一致,再由第三位研究員分析得出最終決定。按照雙盲實驗的設計原則,實驗數據的記錄和獲得由不同的研究員獨立進行,研究員對患者組織檢測結果并不知曉直到統計分析。
1.3 隨訪
對60例ⅢA期患者通過電話隨訪、閱讀再次入院病例等方式每3個月隨訪1次,隨訪至2015年9月。生存時間按月計算,以手術日至末次隨訪所獲得的截尾為準。隨訪內容包括:(1)患者一般狀況;(2)術后復查結果及最后一次復查時間;(3)術后的治療及治療方案;(4)術后發現腫瘤復發及轉移的時間;(5)對已死亡患者了解其死亡前有無復發轉移及死亡原因。
1.4 統計學分析
利用SPSS 22.0(IBM software)統計軟件對實驗數據進行分析。采用卡方或Fisher確切概率法檢驗血漿EGFR突變與患者特征的相關性,用Kaplan-Meier法和log-rank法進行生存率和單因素分析。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 患者臨床特征與血漿檢測敏感性
共有34例血漿EGFR突變陽性。其中男13例、女21例,年齡≥60歲 12例,<60歲22例。吸煙7例,不吸煙27例。腺癌31例,鱗癌0例,腺鱗癌1例,其他類型2例。分化程度為高分化0例,中分化17例,低分化14例,未知3例。ⅠA期1例,ⅠB期3例,ⅡA期2例,ⅡB期1例,ⅢA期20例,ⅢB期1例,Ⅳ期6例。
我們分析了患者特征與血漿檢測敏感性的相關性。發現血漿EGFR突變檢測敏感性與患者性別、年齡、吸煙史無關(P>0.05)。我們的研究中血漿檢測總敏感性為17.2%。但是敏感性在不同TNM分期和分化程度差異很大。ⅢA期敏感性為33.3%,顯著高于ⅠA期1.6% (P=0.000)和ⅠB期7.9% (P=0.004)。低分化癌敏感性為36.8%,顯著高于高分化癌0(P=0.000)和中分化癌15.7% (P=0.010,表 1) 。

198例血漿EGFR突變檢測中檢出四種突變類型,包括外顯子19缺失突變、外顯子21 L858R突變、外顯子21 L861Q突變和外顯子20插入突變。T790M,G719X等突變類型血漿中未檢出。圖 1為具有代表性的上述四種突變類型的檢測結果。

注:A~D分別為代表性的外顯子19缺失突變、外顯子21L858R突變、外顯子21L861Q突變和外顯子20插入突變的ARMS法檢測結果;橙色線為內控信號,黑色、藍色、紫色和綠色分別代表19-Del、L858R、L861Q和20-ins的突變信號
2.2 ⅢA期患者術后1年隨訪結果分析
術后至末次隨訪,時間超過1年的共有39例患者。均獲隨訪,隨訪率為100.0%(39/39)。
2.2.1 術后1年隨訪結果
39例患者病理類型均為腺癌,且有縱隔淋巴結轉移。患者術后1年內發生死亡有5例,復發/轉移有7例。采用Fisher確切概率法對各組與患者轉移/復發或存活情況進行統計分析(表 2)。結果顯示,ⅢA期患者術后1年的轉移/復發或存活情況與性別、年齡、吸煙史等因素不相關(P>0.05)。但血漿EGFR突變檢測陽性患者術后死亡發生率較陰性患者高(P=0.035)。

2.2.2 生存因素分析
采用Kaplan-Meire (log-rank)法檢驗患者年齡、性別、吸煙史、分化程度、術后治療(包括化療、靶向治療和化療+靶向治療)、血漿突變等因素對生存的影響,分別進行單因素分析,結果顯示血漿EGFR突變結果是預測患者術后1年生存的主要因素(表 3)。血漿EGFR突變檢測不同結果的ⅢA期患者的術后1年生存率曲線(圖 2),可見血漿EGFR突變檢測陽性患者1年生存率顯著低于血漿EGFR突變檢測陰性患者(P=0.014)。


2.3 血漿cfDNA濃度與患者特征的相關性
cfDNA濃度中位數為17.34 μg/ml (區間 2.01~92.80 μg/ml)。我們的研究發現cfDNA濃度與患者特征諸如年齡、性別、吸煙史、病理及TNM分期無相關性。表 4為患者特征與cfDNA濃度的分析。

3 討論
獲得組織標本進行EGFR突變檢測存在諸多困難,這包括進展期/轉移患者喪失手術治療的機會,或因手術并發癥、經濟因素的考慮放棄手術,從而無法獲得組織標本用于檢測。穿刺活檢過程中同樣也會增加腫瘤種植到其它部位的風險[14]。因此,研究EGFR突變檢測的組織標本替代品十分重要。體液標本可以很方便的通過微創手段獲得,并且在治療過程中可以實現基因動態監控,可指導臨床及時改變治療策略。近年來血液EGFR突變檢測成為研究熱點。但以往血液EGFR突變檢測的研究重點在于進展期/轉移患者,早期患者檢測尚缺乏實驗室數據。
本文對早期NSCLC血漿EGFR突變檢測敏感性與患者特征的相關性進行了分析。我們收集了198例組織EGFR突變陽性患者的血漿,其中早期(ⅠA~ⅢA期)有183例,占92.4%。血漿EGFR突變檢測總的敏感性為17.2%,介于此前研究的0%~36%之間[12-13]。血漿EGFR突變檢測敏感性與TNM分期、分化程度的相關性分析發現,血漿EGFR突變檢測敏感性與患者TNM分期正相關,與患者腫瘤分化程度負相關。ⅠA期為 1.6%,ⅢA期為33.3%。Ⅳ期為 50%,與此前其他發表的文獻結果基本一致;高分化癌敏感性為0%,低分化癌為36.8%,兩者差異有統計學意義。因此,對于ⅠA期、ⅠB期、ⅡA期及高分化癌患者,說明其血漿EGFR突變檢測不能作為常規方法使用。然而,Ⅲ期及低分化癌的敏感性明顯升高,表明這類患者血漿可用于EGFR突變檢測,突變動態監控及TKI耐藥監控,特別是對不能通過手術取到組織的患者可血漿代替組織檢測。對于鱗癌,腺鱗癌及其他類型(大細胞癌、支氣管肺泡癌、肉瘤樣癌)血漿EGFR檢測的可靠性,還有待更大的樣本量進行驗證。
血漿EGFR突變檢測結果對ⅢA期NSCLC患者的存活情況有預測價值。NSCLC的生存預后受到多種因素的影響,本文特別結合血漿EGFR突變檢測結果,對ⅢA期患者生存預后進行隨訪分析,發現術后1年內,血漿EGFR突變檢測陽性患者死亡發生幾率較陰性患者高(P=0.035),生存分析提示血漿EGFR突變結果是預測患者術后1年生存的重要因素。這一結果雖然僅僅限于短期內小樣本量隨訪研究,但依然具有前瞻性。血漿EGFR突變檢測結果可能成為一項預測NSCLC患者術后預后的新指標,從而指導臨床采取更科學的治療手段和預防措施,延長非小細胞肺癌患者的術后生存期。
早期患者血中腫瘤來源DNA極少,是血漿檢測存在假陰性和cfDNA濃度在各分期無顯著差異的主要原因。本文中164例組織突變陽性患者的血漿EGFR突變檢測結果為陰性,其中大部分為早期患者。并且我們發現血漿cfDNA濃度與患者性別、年齡、吸煙史、病理類型、TNM分期及分化程度等沒有相關性。考慮到早期腫瘤細胞凋亡和壞死釋放進血液的DNA量極少,因此,檢測EGFR突變基因十分困難,cfDNA濃度也不可能隨著腫瘤特征的變化發生巨大的差異。
總的來說,我們的研究表明,血漿可能成為早期NSCLC患者EGFR檢測的組織標本替代品。盡管目前血漿還不能完全代替組織,但是我們推薦對ⅢA期和低分化癌患者運用血漿進行基因診斷,基因突變動態監控和TKI耐藥檢測。對于血漿檢測預測NSCLC遠期生存預后的作用,我們下一步將進行更大的樣本量,更全面細致的隨訪分析,為其提供更加有力的依據。
肺癌(lung cancer)是發病率和死亡率最高的惡性腫瘤之一[1]。肺癌中80%~90%為非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)[2]。近年來,盡管肺癌的診斷及手術、化療、放療等綜合治療手段不斷改進,但肺癌患者的預后并無明顯改善[3]。靶向藥物的應用大大延長了部分患者生存時間,代表性靶向藥物是酪氨酸激酶抑制劑(TKI)。多項臨床研究證實EGFR突變患者服用TKI藥物可有效提高無進展生存期(PFS)和總生存期(OS)[4-6]。
組織檢測EGFR突變是評估患者對TKI藥物療效的金標準,但臨床上并不是每例患者都能取得組織標本用于檢測[7]。因此,使用其他標本代替組織進行EGFR突變檢測成為目前研究的熱點,諸如胸腔積液[8]、血漿或血清等。血液檢測EGFR突變是一種非侵入性的,代替組織標本動態監測患者基因信息的方法,方便臨床上對患者做出診斷,同時對服用TKI藥物的患者,還可以在后續病程中對其進行EGFR耐藥監控。cfDNA中EGFR突變情況的動態變化,可以有效預測服用TKI藥物患者的臨床預后[9]。
此前一系列的研究表明對進展期NSCLC使用血漿檢測EGFR突變是可行的。但各研究的敏感性差異較大,對于早期NSCLC的血漿EGFR突變檢測研究很少,研究方法缺乏標準性[10-13]。因而,用其結果來評估早期血漿檢測的敏感性的可靠性有限。
本文采用ARMS法檢測早期NSCLC患者血漿EGFR突變,并通過分析血漿檢測敏感性與患者特征的關系,確定可使用血漿進行基因診斷,EGFR動態監控早期NSCLC患者。同時對ⅢA期患者進行術后隨訪,探討血漿EGFR突變檢測對預測NSCLC患者術后生存預后的價值。
1 材料與方法
1.1 材料
收集2014年2月至2015年6月期間第四軍醫大學唐都醫院胸腔外科手術切除新鮮NSCLC腫瘤組織(術前均未行放療、化療及靶向治療)。研究實施前,所有患者均已簽署知情同意書。
1.1.1 組織標本
所有組織均來源于唐都醫院胸腔外科手術切除標本。組織標本均經過唐都醫院病理科確診為非小細胞肺癌。部分Ⅳ期患者為單發腦轉移或腎上腺轉移,有手術切除指征,其余Ⅳ期患者手術只為獲取組織進行病理診斷。
1.1.2 血漿標本采集
于非小細胞肺癌患者手術前1 d抽取全血5 ml,置于乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝管,并在抽取后4 h內處理血液。于3 000 r/min離心15 min,2 ml上清即血漿移到無菌離心管,凍存于-80℃。選取198例經組織檢測證實有EGFR突變的NSCLC患者血漿標本作為研究對象。其中男86例、女112例,年齡36~78歲,吸煙52例,不吸煙146例(不吸煙定義為一生吸煙少于100支)。腺癌183例、鱗癌8例、腺鱗癌4例,其他類型3例,包括大細胞癌,肉瘤樣癌,細支氣管肺泡癌。分化程度為高分化45例,中分化108例,低分化38例,不確定7例;根據2014 NCCN非小細胞肺癌指南TNM分期標準,ⅠA期62例,ⅠB期38例,ⅡA期18例,ⅡB期5例,ⅢA期60例,ⅢB期3例,Ⅳ期12例。
1.2 方法
1.2.1 血漿DNA的提取
采用艾德血漿/血清DNA提取試劑盒(廈門艾德公司)按照操作說明提取血漿cfDNA,提取的cfDNA濃度和純度由Beckman Coulter DU800紫外分光光度儀測定。提取的DNA儲存于-20 ℃備用。
1.2.2 實時定量熒光PCR分析血漿EGFR突變
ARMS法具有高敏感度和檢測快速的優點,可以檢測到低至1%的突變。45 μl提取的cfDNA被用于EGFR突變檢測。按照艾德EGFR突變檢測試劑盒(廈門艾德公司)操作說明書步驟,應用實時定量PCR儀 (Agilent StrataGene Mx3000P,USA)檢測EGFR突變。PCR過程包括三個階段,第一階段包括1個循環(95 ℃,5 min),第二階段95 ℃ 25 s,64 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s共15個循環,第三階段93 ℃ 25 s,60 ℃ 35 s,72 ℃ 20 s,共31個循環。檢測結果由兩位專業的研究人員判讀和分析。如果判讀結果不一致,再由第三位研究員分析得出最終決定。按照雙盲實驗的設計原則,實驗數據的記錄和獲得由不同的研究員獨立進行,研究員對患者組織檢測結果并不知曉直到統計分析。
1.3 隨訪
對60例ⅢA期患者通過電話隨訪、閱讀再次入院病例等方式每3個月隨訪1次,隨訪至2015年9月。生存時間按月計算,以手術日至末次隨訪所獲得的截尾為準。隨訪內容包括:(1)患者一般狀況;(2)術后復查結果及最后一次復查時間;(3)術后的治療及治療方案;(4)術后發現腫瘤復發及轉移的時間;(5)對已死亡患者了解其死亡前有無復發轉移及死亡原因。
1.4 統計學分析
利用SPSS 22.0(IBM software)統計軟件對實驗數據進行分析。采用卡方或Fisher確切概率法檢驗血漿EGFR突變與患者特征的相關性,用Kaplan-Meier法和log-rank法進行生存率和單因素分析。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 患者臨床特征與血漿檢測敏感性
共有34例血漿EGFR突變陽性。其中男13例、女21例,年齡≥60歲 12例,<60歲22例。吸煙7例,不吸煙27例。腺癌31例,鱗癌0例,腺鱗癌1例,其他類型2例。分化程度為高分化0例,中分化17例,低分化14例,未知3例。ⅠA期1例,ⅠB期3例,ⅡA期2例,ⅡB期1例,ⅢA期20例,ⅢB期1例,Ⅳ期6例。
我們分析了患者特征與血漿檢測敏感性的相關性。發現血漿EGFR突變檢測敏感性與患者性別、年齡、吸煙史無關(P>0.05)。我們的研究中血漿檢測總敏感性為17.2%。但是敏感性在不同TNM分期和分化程度差異很大。ⅢA期敏感性為33.3%,顯著高于ⅠA期1.6% (P=0.000)和ⅠB期7.9% (P=0.004)。低分化癌敏感性為36.8%,顯著高于高分化癌0(P=0.000)和中分化癌15.7% (P=0.010,表 1) 。

198例血漿EGFR突變檢測中檢出四種突變類型,包括外顯子19缺失突變、外顯子21 L858R突變、外顯子21 L861Q突變和外顯子20插入突變。T790M,G719X等突變類型血漿中未檢出。圖 1為具有代表性的上述四種突變類型的檢測結果。

注:A~D分別為代表性的外顯子19缺失突變、外顯子21L858R突變、外顯子21L861Q突變和外顯子20插入突變的ARMS法檢測結果;橙色線為內控信號,黑色、藍色、紫色和綠色分別代表19-Del、L858R、L861Q和20-ins的突變信號
2.2 ⅢA期患者術后1年隨訪結果分析
術后至末次隨訪,時間超過1年的共有39例患者。均獲隨訪,隨訪率為100.0%(39/39)。
2.2.1 術后1年隨訪結果
39例患者病理類型均為腺癌,且有縱隔淋巴結轉移。患者術后1年內發生死亡有5例,復發/轉移有7例。采用Fisher確切概率法對各組與患者轉移/復發或存活情況進行統計分析(表 2)。結果顯示,ⅢA期患者術后1年的轉移/復發或存活情況與性別、年齡、吸煙史等因素不相關(P>0.05)。但血漿EGFR突變檢測陽性患者術后死亡發生率較陰性患者高(P=0.035)。

2.2.2 生存因素分析
采用Kaplan-Meire (log-rank)法檢驗患者年齡、性別、吸煙史、分化程度、術后治療(包括化療、靶向治療和化療+靶向治療)、血漿突變等因素對生存的影響,分別進行單因素分析,結果顯示血漿EGFR突變結果是預測患者術后1年生存的主要因素(表 3)。血漿EGFR突變檢測不同結果的ⅢA期患者的術后1年生存率曲線(圖 2),可見血漿EGFR突變檢測陽性患者1年生存率顯著低于血漿EGFR突變檢測陰性患者(P=0.014)。


2.3 血漿cfDNA濃度與患者特征的相關性
cfDNA濃度中位數為17.34 μg/ml (區間 2.01~92.80 μg/ml)。我們的研究發現cfDNA濃度與患者特征諸如年齡、性別、吸煙史、病理及TNM分期無相關性。表 4為患者特征與cfDNA濃度的分析。

3 討論
獲得組織標本進行EGFR突變檢測存在諸多困難,這包括進展期/轉移患者喪失手術治療的機會,或因手術并發癥、經濟因素的考慮放棄手術,從而無法獲得組織標本用于檢測。穿刺活檢過程中同樣也會增加腫瘤種植到其它部位的風險[14]。因此,研究EGFR突變檢測的組織標本替代品十分重要。體液標本可以很方便的通過微創手段獲得,并且在治療過程中可以實現基因動態監控,可指導臨床及時改變治療策略。近年來血液EGFR突變檢測成為研究熱點。但以往血液EGFR突變檢測的研究重點在于進展期/轉移患者,早期患者檢測尚缺乏實驗室數據。
本文對早期NSCLC血漿EGFR突變檢測敏感性與患者特征的相關性進行了分析。我們收集了198例組織EGFR突變陽性患者的血漿,其中早期(ⅠA~ⅢA期)有183例,占92.4%。血漿EGFR突變檢測總的敏感性為17.2%,介于此前研究的0%~36%之間[12-13]。血漿EGFR突變檢測敏感性與TNM分期、分化程度的相關性分析發現,血漿EGFR突變檢測敏感性與患者TNM分期正相關,與患者腫瘤分化程度負相關。ⅠA期為 1.6%,ⅢA期為33.3%。Ⅳ期為 50%,與此前其他發表的文獻結果基本一致;高分化癌敏感性為0%,低分化癌為36.8%,兩者差異有統計學意義。因此,對于ⅠA期、ⅠB期、ⅡA期及高分化癌患者,說明其血漿EGFR突變檢測不能作為常規方法使用。然而,Ⅲ期及低分化癌的敏感性明顯升高,表明這類患者血漿可用于EGFR突變檢測,突變動態監控及TKI耐藥監控,特別是對不能通過手術取到組織的患者可血漿代替組織檢測。對于鱗癌,腺鱗癌及其他類型(大細胞癌、支氣管肺泡癌、肉瘤樣癌)血漿EGFR檢測的可靠性,還有待更大的樣本量進行驗證。
血漿EGFR突變檢測結果對ⅢA期NSCLC患者的存活情況有預測價值。NSCLC的生存預后受到多種因素的影響,本文特別結合血漿EGFR突變檢測結果,對ⅢA期患者生存預后進行隨訪分析,發現術后1年內,血漿EGFR突變檢測陽性患者死亡發生幾率較陰性患者高(P=0.035),生存分析提示血漿EGFR突變結果是預測患者術后1年生存的重要因素。這一結果雖然僅僅限于短期內小樣本量隨訪研究,但依然具有前瞻性。血漿EGFR突變檢測結果可能成為一項預測NSCLC患者術后預后的新指標,從而指導臨床采取更科學的治療手段和預防措施,延長非小細胞肺癌患者的術后生存期。
早期患者血中腫瘤來源DNA極少,是血漿檢測存在假陰性和cfDNA濃度在各分期無顯著差異的主要原因。本文中164例組織突變陽性患者的血漿EGFR突變檢測結果為陰性,其中大部分為早期患者。并且我們發現血漿cfDNA濃度與患者性別、年齡、吸煙史、病理類型、TNM分期及分化程度等沒有相關性。考慮到早期腫瘤細胞凋亡和壞死釋放進血液的DNA量極少,因此,檢測EGFR突變基因十分困難,cfDNA濃度也不可能隨著腫瘤特征的變化發生巨大的差異。
總的來說,我們的研究表明,血漿可能成為早期NSCLC患者EGFR檢測的組織標本替代品。盡管目前血漿還不能完全代替組織,但是我們推薦對ⅢA期和低分化癌患者運用血漿進行基因診斷,基因突變動態監控和TKI耐藥檢測。對于血漿檢測預測NSCLC遠期生存預后的作用,我們下一步將進行更大的樣本量,更全面細致的隨訪分析,為其提供更加有力的依據。