引用本文: 歐陽靈藝, 賀濤, 邢怡橋. DJ-1蛋白對視神經鉗夾傷后小鼠視網膜神經節細胞及視功能的影響. 中華眼底病雜志, 2021, 37(5): 377-384. doi: 10.3760/cma.j.cn511434-20201218-00621 復制
視網膜神經節細胞(RGC)是將視覺信息從視網膜傳遞到大腦的長投射神經元,其變性與死亡和多種視神經相關病變有關。其中,青光眼是引起視神經病變最常見的疾病,其特征是RGC和視神經進行性、不可逆損傷[1-2]。目前青光眼臨床治療以降低眼內壓為主,尚無有效方法治療RGC丟失和視神經損傷[3-4]。因此,探究青光眼視神經損傷機制,尋找潛在的神經保護因子意義重大。Park7基因與帕金森病(PD)密切相關,其編碼的蛋白DJ-1在多種神經退行性疾病如PD、阿爾茲海默癥(AD)以及腦缺血再灌注中具有重要的保護作用[5-9]。但其在視神經損傷中的作用尚不明確。為探究DJ-1蛋白在視神經損傷中的具體作用,本研究通過玻璃體腔注射重組腺相關病毒(rAAV)敲低Park7基因,下調視網膜中DJ-1蛋白表達,建立視神經鉗夾(ONC)模型,從形態學和功能學方面評估小鼠RGC變化,初步闡述DJ-1蛋白在ONC損傷中調控作用。現將結果報道如下。
1 材料和方法
1.1 材料
健康雄性C57BL/6J小鼠165只,8周齡,體重17~21 g,清潔級,遼寧長生生物技術股份有限公司提供[許可證號:SYSK(鄂)2015-0027]。小鼠飼養于標準(12 h明/12 h暗交替)清潔級環境,實驗動物飼養及操作均遵循《湖北省實驗動物管理條例》的規定。敲低Park7基因的rAAV2- shRNA(Park7)-綠色熒光蛋白(GFP)和僅帶有GFP的空白rAAV(rAAV2-GFP)(武漢樞密腦科學技術有限公司),病毒滴度>1.0×1012 vg/ml。抗DJ-1抗體(美國ABCAM公司);抗Bax抗體、抗B淋巴細胞瘤/白血病-2(Bcl-2)抗體、抗Brn3a抗體、AlexaFlour594羊抗兔抗體、AlexaFlour488羊抗兔抗體(美國CST公司);抗磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)抗體、抗GFP抗體、抗辣根過氧化物酶(HRP)抗體(武漢塞維爾生物科技有限公司);反向自閉合5號Dumont鑷(美國World Precision Instruments公司);全自動玻璃體腔顯微注射儀(美國哈佛儀器);冰切機CM1950(德國Leica公司);高靈敏度化學發光成像系統(美國Bio-rad公司);激光共聚焦顯微鏡FV1200(日本Olympus公司);多焦視覺電生理儀RetiMINER(重慶愛爾曦醫療設備有限公司);虛擬光眼視動力儀OptoMotry(武漢大學眼科研究所)。
1.2 實驗動物分組和建模
采用隨機數字表法將小鼠分為正常組、ONC 2 d組、ONC 5 d組、ONC 7 d組(實驗1)和對照組、ONC組、Park7組、Park7-ONC組、GFP-ONC組(實驗2)。ONC 2 d組、ONC 5 d組、ONC 7 d組建立ONC模型。于顳側穹結膜處剪開外眥,眶內暴露視神經后反向自閉合鑷夾持視神經10 s,過程中可觀察到模型眼瞳孔逐漸散大,直接對光反射消失。手術中避免損傷眼部血管,鉗夾后檢眼鏡檢查視網膜血管血流狀態,確認視網膜血液供應正常。正常組小鼠不作任何處理。建模后2、5、7 d處死取材。
Park7組、Park7-ONC組小鼠雙眼于角鞏膜緣下2.0 mm處應用全自動玻璃體腔顯微注射儀行玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP 1 μl,病毒滴度1.0× vg/ml;GFP-ONC組小鼠玻璃體腔注射等量等滴度rAAV2-GFP。玻璃體腔注射后23 d,ONC組、Park7-ONC組、GFP-ONC組建立ONC模型,建模后5 d進行后續實驗。對照組小鼠不做任何處理。剔除手術中及手術后眼部出血、晶狀體受損或眼部感染的小鼠,最終實驗1、2分別納入37、116只小鼠進入后續實驗,均以雙眼為實驗眼。
1.3 激光共聚焦顯微鏡觀察病毒轉染情況
根據前期預實驗結果,玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP 4周后,對照組、Park組各隨機選取3只小鼠,頸椎脫臼處死摘除眼球,固定脫水后將視網膜包埋于OCT膠中,冰切機經視神經出口處作矢狀切片,厚度14 μm,4 ℃抗GFP抗體(1:500)封閉孵育過夜。AlexaFlour488羊抗兔抗體(1:500)室溫孵育4 h,滴加抗熒光淬滅劑后封片。激光共聚焦顯微鏡觀察病毒轉染情況。
1.4 全視網膜鋪片及RGC計數
隨機選取對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各3只,頸椎脫臼處死摘除眼球,固定剝離視網膜,4 ℃封閉過夜。抗Brn3a抗體(1∶500)4 ℃孵育2 d;Alexa Flour594羊抗兔抗體(1∶500)室溫下孵育4 h。將RGC層(GCL)朝上放置于載玻片上,將視網膜均勻地剪成4瓣,滴加抗熒光淬滅劑后封片。激光共聚焦顯微鏡觀察,10×40倍視野下,分別在距視盤約1.5、2.5、3.5 mm處0.3 mm×0.3 mm區域處取3個視野,4個象限共12個視野[10],拍照并應用Image J軟件對Brn3a染色的細胞進行計數。
1.5 全視野閃光視網膜電圖(ff-ERG)
隨機選取對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各7只,參照文獻[11]的方法行ff-ERG檢查。暗適應12 h后于紅色照明下腹腔注射戊巴比妥鈉全身麻醉,0.5%鹽酸去氧腎上腺素、0.5%托吡卡因散瞳。鍍金線圈電極作為記錄電極置于角膜中央表面,銀絲電極插入兩耳間皮下作為參考電極,鐵夾夾住尾部接地。依次使用0.001、0.003、0.010、0.030、0.100、0.300、1.000、3.000 cds/m2的白光作為閃光刺激,記錄小鼠a、b波潛伏期及振幅。光亮度為3.000 cd·s/m2時記錄振蕩電位(OPs),Ops主要振幅(OP1、OP2、OP3)的總和定義為Ops的大小。觀察明視負向反應(PhNR),參照文獻[12]的方法,先于光亮度10.000 cd·s/m2的藍色和綠色背景中明適應15 min,再以光亮度6.280 cd·s/m2藍色閃光誘發刺激,記錄PhNR潛伏期及振幅。所有振幅均為該波波峰/谷相對于基線的距離。
1.6 視動反應(OMR)檢測小鼠視敏度
隨機選取對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各7只,參照文獻[13-14]的方法,采用虛擬光眼視動力儀OptoMotry檢測各組小鼠視敏度。小鼠暗適應4 h后置于裝置平臺中心,周圍4個屏幕上顯示確定對比度的轉動光柵,當小鼠感知到光柵投射出的以一定速度轉動的圓柱后,頭部跟隨圓柱旋轉并產生角速度與圓柱近似運動,將小鼠能產生反射的最高光柵空間頻率(cyc/deg)作為視敏度。
1.7 蛋白質免疫印跡法(Western blot)檢測小鼠視網膜中DJ-1、Bax、Bcl-2蛋白相對表達水平
隨機選取正常組、不同時間ONC組以及對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各3只,頸椎脫臼處死小鼠摘除眼球,提取視網膜蛋白,測定蛋白質濃度后進行電泳。每個泳道35 μg蛋白樣品,通過12%十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質,轉膜后封閉1 h,抗DJ-1抗體、抗Bcl-2抗體、抗Bax抗體、抗GAPDH抗體(均為1:1000)4 ℃孵育過夜。室溫下加入二抗HRP(1:8000)孵育,加入增強化學發光劑反應后采用Bio-rad化學發光成像儀采集圖像。使用分析軟件Image J對灰度值進行分析,以GAPDH作為內參評估目的蛋白的相對表達量。
1.8 統計學分析
采用SPSS21.0軟件行統計學分析。呈正態分布的計量資料以均數±標準差(±s)表示。多組間數據比較采用單因素方差分析;組間兩兩比較采用最小顯著差法t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
Western blot檢測結果顯示,正常組、ONC 2 d組、ONC 5 d組、ONC 7 d組小鼠視網膜中DJ-1蛋白相對表達量分別為0.516 8±0.015 3、0.830 8±0.029 0、0.592 8±0.017 7、0.300 4±0.005 6;與正常組比較,ONC2 d組、ONC5 d組小鼠視網膜DJ-1蛋白相對表達量均顯著上升,差異有統計學意義(t=16.610、5.628,P<0.01、<0.05)(圖1)。

激光共聚焦顯微鏡觀察發現,病毒轉染后4周,對照組小鼠視網膜各層未見GFP表達(圖2A);Park7組小鼠視網膜GCL、內叢狀層(IPL)可見強GFP表達(圖2B)。

激光共聚焦顯微鏡觀察發現,對照組小鼠RGC邊界清晰,胞核結構清楚,染色正常;不同ONC時間組小鼠RGC結構模糊,數量下降(圖3A~3E)。對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠RGC密度分別為(4 031.5±260.4)、(3 935.8±145.3)、(1 486.5±251.2)、(2 170.8±143.4)、(2 195.8±133.2)個/mm2。與對照組比較,ONC組小鼠視網膜RGC密度明顯下降,差異有統計學意義(t=16.520,P<0.000);與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視網膜RGC密度明顯下降,差異有統計學意義(t=6.074,P<0.01)(圖4)。


ff-ERG檢測結果顯示,隨刺激光亮度增加,對照組小鼠暗適應a波、b波潛伏期逐漸縮短,振幅逐漸增大(圖5A,5B)。刺激光亮度3.000 cd·s/m2,對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠暗適應a波、b波潛伏期及振幅比較,差異均無統計學意義(潛伏期:F= 0.503、1.978,P=0.734、0.137;振幅:F=0.439、1.451,P=0.779、0.247);與對照組比較,ONC組小鼠Ops、PhNR振幅明顯下降。差異有統計學意義(t=15.070、12.800,P<0.000、<0.001);與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠Ops、PhNR振幅明顯下降降,差異有統計學意義(t=4.042、5.062,P<0.05、<0.01)(圖5C~5D);各組小鼠PhNR潛伏期比較,差異無統計學意義(F= 1.327,P=0.287)。

暗適應OMR檢測結果顯示,對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠視敏度分別為(0.475±0.026)、(0.465±0.024)、(0.110±0.021)、(0.145±0.037)、(0.140± 0.040)cyc/deg。與對照組小鼠比較,ONC組小鼠視敏度明顯下降,差異有統計學意義(t=23.020,P<0.000);與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視敏度明顯下降,差異有統計學意義(t=3.669,P<0.05)(圖6)。

Western blot檢測結果顯示,Park7組與對照組、Park7-ONC組與ONC組比較,小鼠視網膜中DJ-1蛋白相對表達量均明顯下調,差異有統計學意義(t=39.730、35.700,P<0.000、<0.000);ONC組與GFP-ONC組比較,差異無統計學意義(t= 0.739,P=0.983)。與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視網膜中Bax蛋白相對表達量明顯升高,Bcl-2蛋白相對表達量明顯降低,差異均有統計學意義(t=5.960、9.710,P<0.05、<0.05);Park7-ONC組Bcl-2/Bax相對表達量比值明顯低于ONC組,差異有統計學意義(t=13.620,P<0.01)(表1,圖7)。



3 討論
Park7基因是PD的致病基因之一,其編碼蛋白DJ-1具有抗氧化、轉錄調控和蛋白質降解等多種功能[15-16]。既往研究發現,上調DJ-1蛋白可以在PD和AD等神經退行性疾病中產生一定神經保護作用,下調DJ-1蛋白,細胞會更容易發生氧化應激從而走向凋亡[17]。在眼部病變中可以改善視網膜色素上皮的氧化應激[18],但在RGC和視神經病變中的作用及機制尚不明確。小鼠ONC模型是研究青光眼、視神經炎及外傷性視神經損傷的實驗基礎,不同的視神經病變的共同特征是RGC凋亡和軸突損傷[19]。因此,本研究通過敲低Park7基因,下調DJ-1蛋白,建立ONC模型,觀察RGC的存活、內層視網膜電活動和視功能的變化,探究DJ-1蛋白對RGC的影響及機制。
我們發現,C57BL/6J小鼠ONC損傷后,前期視網膜DJ-1蛋白相對表達量上升。因此,本研究選擇玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP下調視網膜DJ-1蛋白表達,為后續實驗提供基礎。本研究結果顯示,玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP后,Park7組小鼠GCL及IPL可見強綠色熒光表達,說明rAAV導入視網膜成功,主要表達于GCL和IPL。ONC損傷5 d后,小鼠RGC受損,數量減少。與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視網膜中DJ-1蛋白相對表達量下調,視網膜RGC平均密度進一步下降,丟失加劇。說明RGC存活與DJ-1蛋白表達存在關聯,或許可以為受損RGC提供保護作用。
ff-ERG可以非侵入性地測量各種視網膜細胞產生的復合場電位,是用于客觀評估視網膜功能的有效工具[20]。暗適應a波和b波分別反映光感受器細胞和雙極細胞的功能。Ops是出現在b波后的高頻子波,與內部視網膜細胞的電活動相關[21-22];PhNR起源于RGC的電活動,代表視網膜內層的功能狀態[23]。本研究結果顯示,與對照組比較,ONC組小鼠Ops、PhNR振幅明顯下降;Park7-ONC組小鼠較ONC組Ops、PhNR振幅明顯下降。以上結果提示ONC以損傷小鼠RGC及內層視網膜功能為主,DJ-1蛋白下調進一步加重了損傷,提示DJ-1蛋白在ONC損傷中可能具有潛在的保護RGC電反應功能的作用。
ONC損傷后,小鼠視敏度明顯下降,在下調DJ-1蛋白后,ONC損傷小鼠視敏度進一步降低,視功能減退加重。提示DJ-1蛋白對于ONC小鼠的視功能可能具有保護作用。
本研究結果顯示,Park7組與對照組、Park7-ONC組與ONC組比較,DJ-1蛋白表達量均明顯下調,說明DJ-1蛋白被成功下調。Park7-ONC組Bax蛋白表達量明顯高于ONC組,Bcl-2蛋白相對表達量、Bcl-2/Bax的相對表達量明顯低于ONC組,說明DJ-1蛋白下調,可能是通過下調Bcl-2,上調Bax,使得Bcl-2/Bax比值下降,促進RGC凋亡,導致ONC小鼠RGC、視網膜電生理及視功能損傷加重。
凋亡是細胞死亡的一種調控方式,Bcl-2和Bax蛋白是細胞凋亡重要調節因子[24-25],其動態平衡輕微變化可能抑制或促進細胞死亡。研究表明,Bcl-2作為抑制凋亡蛋白有多重作用方式,如形成同源二聚體和異源二聚體,保持線粒體的完整性從而保護細胞存活[26]。促凋亡蛋白Bax濃度的增加會削弱Bcl-2功能,啟動凋亡信號,促使細胞死亡。本研究結果證實DJ-1蛋白不僅在形態學上對RGC具有保護作用,還可以從內層視網膜電生理反應及視功能方面改善ONC帶來的損傷。這種保護作用可能是通過調控凋亡相關蛋白Bcl-2和Bax實現。
氧化應激可通過凋亡級聯反應誘導神經元損傷。活性氧(ROS)的產生激活了p38絲裂原活化蛋白激酶,隨后促進Bax激活,Bax可以穿透線粒體膜引起細胞色素C的釋放并激活細胞內在的凋亡途徑[27-28]。DJ-1參與多種信號通路,其中最重要的是幫助細胞抵抗氧化應激和隨后出現的細胞凋亡[29],起到神經保護功能。DJ-1半胱氨酸殘基Cys106對細胞內氧化應激最敏感[30],當Cys106殘基被氧化為酸性亞型時,DJ-1發揮其清除ROS的作用。同時DJ-1作為一種轉錄共激活因子,可以促進谷胱甘肽的超氧化物歧化酶轉錄[31],并調節過氧化物酶2的活性[32],從而降低ROS水平。也有研究發現,DJ-1蛋白可以穩定核因子E2相關因子2,促進其從細胞質轉移到細胞核,上調抗氧化劑基因的表達[33]。因此,我們推測,DJ-1不僅能通過調節凋亡相關蛋白Bcl-2和Bax來實現ONC后對RGC形態及功能的保護,還可能通過自身的氧化還原作用調節氧化應激,協同調節其他信號通路來抵抗細胞凋亡,從而多角度發揮其保護作用。
視網膜神經節細胞(RGC)是將視覺信息從視網膜傳遞到大腦的長投射神經元,其變性與死亡和多種視神經相關病變有關。其中,青光眼是引起視神經病變最常見的疾病,其特征是RGC和視神經進行性、不可逆損傷[1-2]。目前青光眼臨床治療以降低眼內壓為主,尚無有效方法治療RGC丟失和視神經損傷[3-4]。因此,探究青光眼視神經損傷機制,尋找潛在的神經保護因子意義重大。Park7基因與帕金森病(PD)密切相關,其編碼的蛋白DJ-1在多種神經退行性疾病如PD、阿爾茲海默癥(AD)以及腦缺血再灌注中具有重要的保護作用[5-9]。但其在視神經損傷中的作用尚不明確。為探究DJ-1蛋白在視神經損傷中的具體作用,本研究通過玻璃體腔注射重組腺相關病毒(rAAV)敲低Park7基因,下調視網膜中DJ-1蛋白表達,建立視神經鉗夾(ONC)模型,從形態學和功能學方面評估小鼠RGC變化,初步闡述DJ-1蛋白在ONC損傷中調控作用。現將結果報道如下。
1 材料和方法
1.1 材料
健康雄性C57BL/6J小鼠165只,8周齡,體重17~21 g,清潔級,遼寧長生生物技術股份有限公司提供[許可證號:SYSK(鄂)2015-0027]。小鼠飼養于標準(12 h明/12 h暗交替)清潔級環境,實驗動物飼養及操作均遵循《湖北省實驗動物管理條例》的規定。敲低Park7基因的rAAV2- shRNA(Park7)-綠色熒光蛋白(GFP)和僅帶有GFP的空白rAAV(rAAV2-GFP)(武漢樞密腦科學技術有限公司),病毒滴度>1.0×1012 vg/ml。抗DJ-1抗體(美國ABCAM公司);抗Bax抗體、抗B淋巴細胞瘤/白血病-2(Bcl-2)抗體、抗Brn3a抗體、AlexaFlour594羊抗兔抗體、AlexaFlour488羊抗兔抗體(美國CST公司);抗磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)抗體、抗GFP抗體、抗辣根過氧化物酶(HRP)抗體(武漢塞維爾生物科技有限公司);反向自閉合5號Dumont鑷(美國World Precision Instruments公司);全自動玻璃體腔顯微注射儀(美國哈佛儀器);冰切機CM1950(德國Leica公司);高靈敏度化學發光成像系統(美國Bio-rad公司);激光共聚焦顯微鏡FV1200(日本Olympus公司);多焦視覺電生理儀RetiMINER(重慶愛爾曦醫療設備有限公司);虛擬光眼視動力儀OptoMotry(武漢大學眼科研究所)。
1.2 實驗動物分組和建模
采用隨機數字表法將小鼠分為正常組、ONC 2 d組、ONC 5 d組、ONC 7 d組(實驗1)和對照組、ONC組、Park7組、Park7-ONC組、GFP-ONC組(實驗2)。ONC 2 d組、ONC 5 d組、ONC 7 d組建立ONC模型。于顳側穹結膜處剪開外眥,眶內暴露視神經后反向自閉合鑷夾持視神經10 s,過程中可觀察到模型眼瞳孔逐漸散大,直接對光反射消失。手術中避免損傷眼部血管,鉗夾后檢眼鏡檢查視網膜血管血流狀態,確認視網膜血液供應正常。正常組小鼠不作任何處理。建模后2、5、7 d處死取材。
Park7組、Park7-ONC組小鼠雙眼于角鞏膜緣下2.0 mm處應用全自動玻璃體腔顯微注射儀行玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP 1 μl,病毒滴度1.0× vg/ml;GFP-ONC組小鼠玻璃體腔注射等量等滴度rAAV2-GFP。玻璃體腔注射后23 d,ONC組、Park7-ONC組、GFP-ONC組建立ONC模型,建模后5 d進行后續實驗。對照組小鼠不做任何處理。剔除手術中及手術后眼部出血、晶狀體受損或眼部感染的小鼠,最終實驗1、2分別納入37、116只小鼠進入后續實驗,均以雙眼為實驗眼。
1.3 激光共聚焦顯微鏡觀察病毒轉染情況
根據前期預實驗結果,玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP 4周后,對照組、Park組各隨機選取3只小鼠,頸椎脫臼處死摘除眼球,固定脫水后將視網膜包埋于OCT膠中,冰切機經視神經出口處作矢狀切片,厚度14 μm,4 ℃抗GFP抗體(1:500)封閉孵育過夜。AlexaFlour488羊抗兔抗體(1:500)室溫孵育4 h,滴加抗熒光淬滅劑后封片。激光共聚焦顯微鏡觀察病毒轉染情況。
1.4 全視網膜鋪片及RGC計數
隨機選取對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各3只,頸椎脫臼處死摘除眼球,固定剝離視網膜,4 ℃封閉過夜。抗Brn3a抗體(1∶500)4 ℃孵育2 d;Alexa Flour594羊抗兔抗體(1∶500)室溫下孵育4 h。將RGC層(GCL)朝上放置于載玻片上,將視網膜均勻地剪成4瓣,滴加抗熒光淬滅劑后封片。激光共聚焦顯微鏡觀察,10×40倍視野下,分別在距視盤約1.5、2.5、3.5 mm處0.3 mm×0.3 mm區域處取3個視野,4個象限共12個視野[10],拍照并應用Image J軟件對Brn3a染色的細胞進行計數。
1.5 全視野閃光視網膜電圖(ff-ERG)
隨機選取對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各7只,參照文獻[11]的方法行ff-ERG檢查。暗適應12 h后于紅色照明下腹腔注射戊巴比妥鈉全身麻醉,0.5%鹽酸去氧腎上腺素、0.5%托吡卡因散瞳。鍍金線圈電極作為記錄電極置于角膜中央表面,銀絲電極插入兩耳間皮下作為參考電極,鐵夾夾住尾部接地。依次使用0.001、0.003、0.010、0.030、0.100、0.300、1.000、3.000 cds/m2的白光作為閃光刺激,記錄小鼠a、b波潛伏期及振幅。光亮度為3.000 cd·s/m2時記錄振蕩電位(OPs),Ops主要振幅(OP1、OP2、OP3)的總和定義為Ops的大小。觀察明視負向反應(PhNR),參照文獻[12]的方法,先于光亮度10.000 cd·s/m2的藍色和綠色背景中明適應15 min,再以光亮度6.280 cd·s/m2藍色閃光誘發刺激,記錄PhNR潛伏期及振幅。所有振幅均為該波波峰/谷相對于基線的距離。
1.6 視動反應(OMR)檢測小鼠視敏度
隨機選取對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各7只,參照文獻[13-14]的方法,采用虛擬光眼視動力儀OptoMotry檢測各組小鼠視敏度。小鼠暗適應4 h后置于裝置平臺中心,周圍4個屏幕上顯示確定對比度的轉動光柵,當小鼠感知到光柵投射出的以一定速度轉動的圓柱后,頭部跟隨圓柱旋轉并產生角速度與圓柱近似運動,將小鼠能產生反射的最高光柵空間頻率(cyc/deg)作為視敏度。
1.7 蛋白質免疫印跡法(Western blot)檢測小鼠視網膜中DJ-1、Bax、Bcl-2蛋白相對表達水平
隨機選取正常組、不同時間ONC組以及對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠各3只,頸椎脫臼處死小鼠摘除眼球,提取視網膜蛋白,測定蛋白質濃度后進行電泳。每個泳道35 μg蛋白樣品,通過12%十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質,轉膜后封閉1 h,抗DJ-1抗體、抗Bcl-2抗體、抗Bax抗體、抗GAPDH抗體(均為1:1000)4 ℃孵育過夜。室溫下加入二抗HRP(1:8000)孵育,加入增強化學發光劑反應后采用Bio-rad化學發光成像儀采集圖像。使用分析軟件Image J對灰度值進行分析,以GAPDH作為內參評估目的蛋白的相對表達量。
1.8 統計學分析
采用SPSS21.0軟件行統計學分析。呈正態分布的計量資料以均數±標準差(±s)表示。多組間數據比較采用單因素方差分析;組間兩兩比較采用最小顯著差法t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
Western blot檢測結果顯示,正常組、ONC 2 d組、ONC 5 d組、ONC 7 d組小鼠視網膜中DJ-1蛋白相對表達量分別為0.516 8±0.015 3、0.830 8±0.029 0、0.592 8±0.017 7、0.300 4±0.005 6;與正常組比較,ONC2 d組、ONC5 d組小鼠視網膜DJ-1蛋白相對表達量均顯著上升,差異有統計學意義(t=16.610、5.628,P<0.01、<0.05)(圖1)。

激光共聚焦顯微鏡觀察發現,病毒轉染后4周,對照組小鼠視網膜各層未見GFP表達(圖2A);Park7組小鼠視網膜GCL、內叢狀層(IPL)可見強GFP表達(圖2B)。

激光共聚焦顯微鏡觀察發現,對照組小鼠RGC邊界清晰,胞核結構清楚,染色正常;不同ONC時間組小鼠RGC結構模糊,數量下降(圖3A~3E)。對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠RGC密度分別為(4 031.5±260.4)、(3 935.8±145.3)、(1 486.5±251.2)、(2 170.8±143.4)、(2 195.8±133.2)個/mm2。與對照組比較,ONC組小鼠視網膜RGC密度明顯下降,差異有統計學意義(t=16.520,P<0.000);與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視網膜RGC密度明顯下降,差異有統計學意義(t=6.074,P<0.01)(圖4)。


ff-ERG檢測結果顯示,隨刺激光亮度增加,對照組小鼠暗適應a波、b波潛伏期逐漸縮短,振幅逐漸增大(圖5A,5B)。刺激光亮度3.000 cd·s/m2,對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠暗適應a波、b波潛伏期及振幅比較,差異均無統計學意義(潛伏期:F= 0.503、1.978,P=0.734、0.137;振幅:F=0.439、1.451,P=0.779、0.247);與對照組比較,ONC組小鼠Ops、PhNR振幅明顯下降。差異有統計學意義(t=15.070、12.800,P<0.000、<0.001);與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠Ops、PhNR振幅明顯下降降,差異有統計學意義(t=4.042、5.062,P<0.05、<0.01)(圖5C~5D);各組小鼠PhNR潛伏期比較,差異無統計學意義(F= 1.327,P=0.287)。

暗適應OMR檢測結果顯示,對照組、Park7組、Park7-ONC組、ONC組、GFP-ONC組小鼠視敏度分別為(0.475±0.026)、(0.465±0.024)、(0.110±0.021)、(0.145±0.037)、(0.140± 0.040)cyc/deg。與對照組小鼠比較,ONC組小鼠視敏度明顯下降,差異有統計學意義(t=23.020,P<0.000);與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視敏度明顯下降,差異有統計學意義(t=3.669,P<0.05)(圖6)。

Western blot檢測結果顯示,Park7組與對照組、Park7-ONC組與ONC組比較,小鼠視網膜中DJ-1蛋白相對表達量均明顯下調,差異有統計學意義(t=39.730、35.700,P<0.000、<0.000);ONC組與GFP-ONC組比較,差異無統計學意義(t= 0.739,P=0.983)。與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視網膜中Bax蛋白相對表達量明顯升高,Bcl-2蛋白相對表達量明顯降低,差異均有統計學意義(t=5.960、9.710,P<0.05、<0.05);Park7-ONC組Bcl-2/Bax相對表達量比值明顯低于ONC組,差異有統計學意義(t=13.620,P<0.01)(表1,圖7)。



3 討論
Park7基因是PD的致病基因之一,其編碼蛋白DJ-1具有抗氧化、轉錄調控和蛋白質降解等多種功能[15-16]。既往研究發現,上調DJ-1蛋白可以在PD和AD等神經退行性疾病中產生一定神經保護作用,下調DJ-1蛋白,細胞會更容易發生氧化應激從而走向凋亡[17]。在眼部病變中可以改善視網膜色素上皮的氧化應激[18],但在RGC和視神經病變中的作用及機制尚不明確。小鼠ONC模型是研究青光眼、視神經炎及外傷性視神經損傷的實驗基礎,不同的視神經病變的共同特征是RGC凋亡和軸突損傷[19]。因此,本研究通過敲低Park7基因,下調DJ-1蛋白,建立ONC模型,觀察RGC的存活、內層視網膜電活動和視功能的變化,探究DJ-1蛋白對RGC的影響及機制。
我們發現,C57BL/6J小鼠ONC損傷后,前期視網膜DJ-1蛋白相對表達量上升。因此,本研究選擇玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP下調視網膜DJ-1蛋白表達,為后續實驗提供基礎。本研究結果顯示,玻璃體腔注射rAAV2-shRNA(Park7)-GFP后,Park7組小鼠GCL及IPL可見強綠色熒光表達,說明rAAV導入視網膜成功,主要表達于GCL和IPL。ONC損傷5 d后,小鼠RGC受損,數量減少。與ONC組比較,Park7-ONC組小鼠視網膜中DJ-1蛋白相對表達量下調,視網膜RGC平均密度進一步下降,丟失加劇。說明RGC存活與DJ-1蛋白表達存在關聯,或許可以為受損RGC提供保護作用。
ff-ERG可以非侵入性地測量各種視網膜細胞產生的復合場電位,是用于客觀評估視網膜功能的有效工具[20]。暗適應a波和b波分別反映光感受器細胞和雙極細胞的功能。Ops是出現在b波后的高頻子波,與內部視網膜細胞的電活動相關[21-22];PhNR起源于RGC的電活動,代表視網膜內層的功能狀態[23]。本研究結果顯示,與對照組比較,ONC組小鼠Ops、PhNR振幅明顯下降;Park7-ONC組小鼠較ONC組Ops、PhNR振幅明顯下降。以上結果提示ONC以損傷小鼠RGC及內層視網膜功能為主,DJ-1蛋白下調進一步加重了損傷,提示DJ-1蛋白在ONC損傷中可能具有潛在的保護RGC電反應功能的作用。
ONC損傷后,小鼠視敏度明顯下降,在下調DJ-1蛋白后,ONC損傷小鼠視敏度進一步降低,視功能減退加重。提示DJ-1蛋白對于ONC小鼠的視功能可能具有保護作用。
本研究結果顯示,Park7組與對照組、Park7-ONC組與ONC組比較,DJ-1蛋白表達量均明顯下調,說明DJ-1蛋白被成功下調。Park7-ONC組Bax蛋白表達量明顯高于ONC組,Bcl-2蛋白相對表達量、Bcl-2/Bax的相對表達量明顯低于ONC組,說明DJ-1蛋白下調,可能是通過下調Bcl-2,上調Bax,使得Bcl-2/Bax比值下降,促進RGC凋亡,導致ONC小鼠RGC、視網膜電生理及視功能損傷加重。
凋亡是細胞死亡的一種調控方式,Bcl-2和Bax蛋白是細胞凋亡重要調節因子[24-25],其動態平衡輕微變化可能抑制或促進細胞死亡。研究表明,Bcl-2作為抑制凋亡蛋白有多重作用方式,如形成同源二聚體和異源二聚體,保持線粒體的完整性從而保護細胞存活[26]。促凋亡蛋白Bax濃度的增加會削弱Bcl-2功能,啟動凋亡信號,促使細胞死亡。本研究結果證實DJ-1蛋白不僅在形態學上對RGC具有保護作用,還可以從內層視網膜電生理反應及視功能方面改善ONC帶來的損傷。這種保護作用可能是通過調控凋亡相關蛋白Bcl-2和Bax實現。
氧化應激可通過凋亡級聯反應誘導神經元損傷。活性氧(ROS)的產生激活了p38絲裂原活化蛋白激酶,隨后促進Bax激活,Bax可以穿透線粒體膜引起細胞色素C的釋放并激活細胞內在的凋亡途徑[27-28]。DJ-1參與多種信號通路,其中最重要的是幫助細胞抵抗氧化應激和隨后出現的細胞凋亡[29],起到神經保護功能。DJ-1半胱氨酸殘基Cys106對細胞內氧化應激最敏感[30],當Cys106殘基被氧化為酸性亞型時,DJ-1發揮其清除ROS的作用。同時DJ-1作為一種轉錄共激活因子,可以促進谷胱甘肽的超氧化物歧化酶轉錄[31],并調節過氧化物酶2的活性[32],從而降低ROS水平。也有研究發現,DJ-1蛋白可以穩定核因子E2相關因子2,促進其從細胞質轉移到細胞核,上調抗氧化劑基因的表達[33]。因此,我們推測,DJ-1不僅能通過調節凋亡相關蛋白Bcl-2和Bax來實現ONC后對RGC形態及功能的保護,還可能通過自身的氧化還原作用調節氧化應激,協同調節其他信號通路來抵抗細胞凋亡,從而多角度發揮其保護作用。