目的 探討重組質粒pIRES-hBMP-2-hVEGF165 體外轉染對hBMSCs 成骨誘導分化的影響。 方 法 構建hBMP-2 和hVEGF165 真核共表達載體。取健康成人自愿捐獻的骨髓分離培養hBMSCs，采用陽離子脂質體將構建的質粒pIRES-hBMP-2-hVEGF165、pIRES-hBMP-2、pIRES-hVEGF165 和空質粒載體（pIRES-neo）轉染至hBMSCs，作為A、B、C、D 組；另取相同數量的未轉染細胞作為對照組（E 組）。培養4 周，采用RT-PCR 檢測hBMP-2、hVEGF165 以及骨鈣mRNA 表達，Western blot 檢測細胞 hBMP-2 和 hVEGF165 表達，定量檢測ALP 活性，免疫組織化學方法檢測Col Ⅰ表達。 結 果 與E 組比較，A 組hBMSCs 高表達hBMP-2、hVEGF165、Col Ⅰ及骨鈣素，B 組大量表達骨鈣素及Col Ⅰ，C組高表達hVEGF165，而B 組hVEGF165 及C 組hBMP-2 和Col Ⅰ的表達與D、E 組相似，呈陰性或僅有痕量表達。A、B、C、D 及E 組ALP 活性分別為0.91 ± 0.03、0.90 ± 0.02、0.64 ± 0.03、0.67 ± 0.01、0.66 ± 0.02，A、B 組與E 組比較差異有統計學意義（P lt; 0.05），C、D、E 組差異無統計學意義（P gt; 0.05）。 結論 重組質粒通過陽離子脂質體能成功轉染hBMSCs，外源性hBMP-2 和 hVEGF165 基因在轉染細胞中能持續表達，并能增強hBMSCs 的成骨能力。
目的 構建攜帶hVEGF165 基因的重組腺病毒載體pAdxsi- 增強型綠色熒光蛋白（enhanced green fluorescent protein，EGFP）-hVEGF165 ，體外轉染大鼠BMSCs，觀察轉染后hVEGF165 的表達情況以及對BMSCs 生長增殖的影響，為進行血管再生的基因治療奠定實驗基礎。 方法 將hVEGF165 從原始質粒切下連接到pShuttle- 巨細胞病毒-EGFP 重組穿梭載體，并轉移至pAdxsi 載體上，獲得重組腺病毒載體質粒pAdxsi-EGFP-hVEGF165 ，進行酶切鑒定及基因測序。采用PacI 限制性內切酶線性化pAdxsi-EGFP-hVEGF165 ，并轉染人胚腎細胞HEK293，收獲重組腺病毒，測定病毒滴度。貼壁法培養Wistar 大鼠BMSCs，體外轉染攜帶EGFP 基因的重組腺病毒（pAdxsi-EGFP），熒光倒置相差顯微鏡及流式細胞術確定最佳病毒感染復數（multiplicities of infection，MOI）。依據最佳MOI 轉染pAdxsi-EGFP-hVEGF165 至BMSCs，采用Western blot、RT-PCR 及ELISA 法檢測轉染后hVEGF165 的表達；MTT 法評價轉染后BMSCs 生長增殖情況。 結果 酶切鑒定及基因測序提示重組腺病毒載體質粒含有hVEGF165 cDNA；經多輪感染、擴增后，病毒滴度可達1 × 1010 pfu/mL。熒光倒置相差顯微鏡觀察轉染pAdxsi-EGFP 后MOI 為150 pfu/cell 時轉染效果最佳，流式細胞儀檢測轉染效率約88%。Western blot 和RT-PCR 檢測示，pAdxsi-EGFP-hVEGF165 轉染BMSCs 48 h 后在蛋白質和基因水平均可有效表達hVEGF165 ；ELISA 檢測示其含量在7 d 達高峰，在20 d 時仍有表達，1、3、5、7、9、11、13、15、20 d 各時間點hVEGF165 含量均顯著高于EGFP 基因轉染組及未轉染組（P lt; 0.05）。MTT 結果顯示，各時間點轉染pAdxsi-EGFPhVEGF165的BMSCs 與未轉染組細胞的吸光度（A）值比較差異無統計學意義（P gt; 0.05）。 結論 BMSCs 是一種較理想的基因載體細胞，成功制備的重組腺病毒載體質粒可在MOI 值為150 時將hVEGF165 基因有效轉染至BMSCs；轉染后hVEGF165 表達水平較高、持續時間較長，且對BMSCs 的生長增殖無明顯影響。
目的 探索轉染hVEGF165 基因、人基質細胞衍生因子1α（human stromal cell-derived factor 1α，hSDF- 1α）基因的大鼠成肌細胞在體外mRNA 和蛋白表達，為進一步檢測這兩種基因對血管生成的協同效應奠定基礎。 方法 取新生1 日齡雄性SD 大鼠，采用胰蛋白酶消化法體外分離培養、純化成肌細胞，并采用結蛋白免疫細胞化學染色鑒定。將質粒增強型綠色熒光蛋白（enhanced green fluorescent protein，EGFP）-hVEGF165 和EGFP-hSDF-1α 轉染第3 代成肌細胞（轉染組），以未轉染質粒的細胞作為對照組。體外培養后各時間點行RT-PCR、Western blot、ELISA 法檢測兩種質粒mRNA 及蛋白的表達。 結果 培養的細胞經鑒定確定為成肌細胞。熒光顯微鏡觀察示成功轉染hSDF- 1α和hVEGF165 進入成肌細胞，可見綠色熒光表達。RT-PCR 檢測示轉染組轉染后2、4、6、8 d 均可見hVEGF165 和hSDF- 1αmRNA 的表達，Western blot 檢測示轉染組轉染后2、4、6、8 d 成肌細胞內均有hVEGF165 和hSDF-1α 蛋白表達，對照組均無相關表達。ELISA 檢測示對照組hSDF-1α 和hVEGF165 均穩定表達，呈較低水平。轉染組轉染2 d 時hSDF-1α 和hVEGF165 表達均達較高水平，之后呈逐漸下降趨勢；轉染后各時間點間hSDF-1α 和hVEGF165 表達比較差異均有統計學意義（P lt; 0.05）。轉染組轉染后各時間點與對照組比較差異均有統計學意義（P lt; 0.05）。 結論 轉染hSDF-1α 和hVEGF165 進入大鼠成肌細胞后在體外均有表達，為下一步研究體內是否表達提供了實驗依據。
目的 通過體外實驗探討hVEGF165 和hBMP-7 共表達重組腺相關病毒載體（recombinant adenoassociated virus，rAAV）體外生物學活性，為體內應用其進行骨壞死的基因治療奠定理論基礎。 方法 分別采用rAAVhVEGF165-內部核糖體進入位點序列（internal ribosome entry site，IRES）- hBMP-7（實驗組）、綠色熒光蛋白（green fluorescent protein，GFP）標記的rAAV-IRES-GFP（對照組）轉染體外培養的第3 代兔BMSCs，于轉染后1、2、3、7 及14 d 應用ELISA 法及轉染后14 d 應用Western blot 法鑒定兩組hVEGF165 和hBMP-7 表達；轉染后14 d 行細胞免疫熒光染色觀察hVEGF165 和hBMP-7 表達一致性。應用第3 代人臍靜脈內皮細胞（human umbilical vein endothelial cells，HUVEC）管狀血管形成實驗檢測hVEGF165 蛋白活性。取第3 代BMSCs 行誘導成骨實驗，Gomori 鈣鈷法ALP 染色及茜素紅法鈣鹽染色檢測hBMP-7 蛋白活性。 結果 ELISA 檢測示隨轉染時間延長，兩組hVEGF165 和hBMP-7 表達逐漸升高；實驗組各時間點hVEGF165 和hBMP-7 表達量均明顯高于對照組（P lt; 0.05）。Western blot 檢測示實驗組可見hVEGF165 和hBMP-7表達，對照組未見陽性表達。細胞免疫熒光染色觀察示實驗組hVEGF165 和hBMP-7 染色呈陽性，表達部位和強度具有較好一致性；對照組未見陽性表達。HUVEC 管狀血管形成實驗示實驗組HUVEC 拉長變形、出芽且相互交聯成管狀樣結構；與對照組相比，管狀血管數比較差異有統計學意義（P lt; 0.05）。ALP 染色見實驗組細胞出現深染顆粒，對照組細胞內淺著色；與對照組相比，礦化結節數比較差異有統計學意義（P lt; 0.05）。 結論 雙基因共表達rAAV-hVEGF165-IRES-hBMP-7體外具有良好的生物學活性。
目的 探討hVEGF165 及hBMP-7 共表達重組腺相關病毒載體（recombinant adeno-associated virus，rAAV）介導基因表達的時效性，為體內應用其進行骨壞死的基因治療奠定理論基礎。 方法 應用熒光細胞計數法測定rAAV 轉染兔BMSCs 的最佳轉染復數。分別采用rAAV-hVEGF165- 內部核糖體進入位點序列（internal ribosome entry site，IRES）- hBMP-7（實驗組）、綠色熒光蛋白（green fluorescent protein，GFP）標記平行對照rAAV-IRES-GFP（對照組）在最佳轉染復數條件下轉染體外培養的第3 代兔BMSCs。于不同時間點分別行GFP 表達檢測、RT-PCR 檢測、Western blot 檢測明確rAAV 體外介導基因表達的時效性關系。將實驗組及對照組病毒轉染后的BMSCs 以5 × 106 個/ mL 密度，分別注射至9 只2 月齡純種雄性新西蘭大耳白兔制備的肌袋模型內各1 mL（實驗組1 及對照組1），于不同時間點分別行GFP表達檢測、Western blot 檢測及ELISA 檢測明確rAAV 體內介導基因表達的時效性關系。 結 果 rAAV 轉染兔BMSCs的最佳轉染復數為5 × 104 v.g/cell。通過體外檢測顯示rAAV 轉染BMSCs 后1 d 即有目的基因表達，14 d 時表達強度明顯增強，至28 d 時仍維持較強表達。通過體內檢測顯示體內轉染2 周可檢測到目的基因表達，6 周時表達強 度增強，8 周時仍維持較高水平。ELISA 法檢測實驗組1 細胞培養上清中hVEGF165 和hBMP-7 含量分別為（248.67 ± 75.58）pg/mL 和（4.80 ± 0.61） ng/ mL， 對照組1 分別為（32.28 ± 8.42）pg/mL 和（0.64 ± 0.42）ng/mL，兩組比較差異均有統計學意義（P lt; 0.05）。 結論 雙基因共表達rAAV-hVEGF165-IRES-hBMP-7 具有較好的轉染時效性。
目的 探討hVEGF165 及hBMP-7 共表達重組腺相關病毒（recombinant adeno-associated virus，rAAV）體內誘導成骨及成血管的活性，為股骨頭缺血性壞死（avascular necrosis of the femoral head，ANFH）的AAV 基因治療提供理論基礎。 方法 取體外培養的第3 代兔BMSCs，分別采用以下4 種病毒轉染并分為4 組：rAAV-hVEGF165- 內部核糖體進入位點序列（internal ribosome entry site，IRES）-hBMP-7（A 組）、rAAV-hVEGF165- 綠色熒光蛋白（green fluorescent protein，GFP）（B 組）、rAAV- hBMP-7-GFP（C 組）及rAAV-IRES-GFP（D 組）。取24 只雄性新西蘭大耳白兔制作后肢缺血模型，并隨機分為4 組（n=6），于股骨肌肉內植入上述4 組病毒轉染的BMSCs，8 周后應用超聲影像學檢測兔后肢脛前動脈血流量，行CD34 免疫組織化學染色檢測微血管生成。另取24 只雄性新西蘭大耳白兔制作股骨肌袋模型，并隨機分為4 組（n=6），于肌袋內植入上述4 組病毒轉染的BMSCs，8 周后應用X 線片檢測兔后肢原位骨化，行von Kossa 鈣鹽染色檢測肌肉組織成骨礦化。 結果 病毒注射后動物未出現局部或全身毒性反應。病毒注射后8 周，A 組兔后肢脛前動脈血流百分比及CD34 陽性微血管數均高于其他3 組，差異有統計學意義（P lt; 0.05）；B 組高于C、D 組，差異有統計學意義（P lt; 0.05）；C、D 組間比較差異無統計學意義（P gt; 0.05）。病毒注射后8 周，A、C 組兔后肢肌袋內出現可被X 線檢測到的原位骨化，von Kossa 肌肉組織鈣鹽染色可見大量鈣鹽沉積，且A 組原位骨化及鈣鹽沉積程度均較C 組強；B 組及D 組均未見明顯原位骨化及鈣鹽沉積形成。 結論 rAAV-hVEGF165-IRES-hBMP-7 載體具有體內誘導成骨及成血管的生物學活性。