引用本文: 吳怡媛, 陳思思, 楊超, 魏瑞華, 粘紅. 白細胞介素-23受體過表達對實驗性自身免疫性葡萄膜炎小鼠輔助性T細胞17/調節性T細胞平衡的影響. 中華眼底病雜志, 2022, 38(5): 389-395. doi: 10.3760/cma.j.cn511434-20210809-00428 復制
自身免疫性葡萄膜炎是一種常見的致盲性眼病,其病因及發病機制尚不完全明確[1]。CD4+T細胞在自身免疫性葡萄膜炎中發揮主導作用,其中,輔助性T細胞17(Th17)通過分泌白細胞介素(IL)-17等多種炎性因子,調節固有免疫和適應性免疫反應,是自身免疫性葡萄膜炎的主要致病細胞群[2-4];而調節性T細胞(Treg)特異性表達叉頭狀轉錄因子p3(Foxp3),主要分泌IL-10等抑炎因子,抑制機體對自身抗原的免疫反應[5-6]。研究證實,Th17細胞與Treg細胞的平衡是維持眼內免疫穩態的基礎,該平衡決定了自身免疫性葡萄膜炎的發展和轉歸[7-8]。目前研究認為,IL-23是維持Th17細胞穩定性和致病性的關鍵細胞因子[9-10],IL-23與Th17細胞表面的IL-23受體(IL-23R)結合,促進Th17細胞分泌IL-17、粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子等炎性因子[4]。研究發現,IL-23R/IL-17軸在自身免疫性關節炎、炎性腸病等多種自身免疫性疾病中發揮致病作用[11-12];在Vogt-Koyanagi-Harada綜合征患者的外周血單個核細胞中,IL-23R的表達水平顯著升高[13],提示IL-23R可能參與了自身免疫性葡萄膜炎的發生和發展。但IL-23R對自身免疫性葡萄膜炎的具體作用及機制尚不明確。因此,本研究以實驗性自身免疫性葡萄膜炎(EAU)為研究對象[14],采用慢病毒介導IL-23R過表達,初步探討IL-23R對EAU疾病進程的影響和對Th17/Treg平衡的調控作用。現將結果報道如下。
1 材料和方法
1.1 主要材料
人胚胎腎細胞系293T(美國ATCC細胞庫);IL-23R過表達質粒pReceiver-Lv201-IL-23R及其對照質粒(美國Gene-Copoeia公司);輔助包裝質粒pSPAX2和pMD2.G(美國Addgene公司);LipoFiterTM (上海漢恒生物有限公司);聚乙二醇8000、Dulbecco改良Eagle培養基(美國Gibco公司);光感受器間維生素A類結合蛋白1-20(IRBP1-20)多肽片段(上海生物工程股份有限公司合成);結核分枝桿菌H37RA(美國Difco公司);百日咳毒素、弗氏不完全佐劑(美國Sigma公司);RPMI1640培養基、胎牛血清(美國Hyclone公司);小鼠IL-17酶聯免疫吸附測定(ELISA)試劑盒、重組鼠IL-23蛋白(美國R&D公司);RNA提取試劑盒(美國EZBioscience公司);逆轉錄試劑盒、SYBR Green 2× Master Mix(美國Thermo公司);佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯(PMA)、布雷菲爾得菌素A(BFA)、鈣離子霉素(美國Sigma公司);固定劑、破膜劑、TruStain FcX? PLUS封閉劑、異硫氰酸熒光素(FITC)標記的抗小鼠IL-17流式抗體(FITC-IL-17)、巰基化藻紅蛋白(PE)標記的抗小鼠CD4流式抗體(PE-CD4),FITC標記的抗小鼠CD4流式抗體(FITC-CD4)、PE標記的抗小鼠Foxp3流式抗體(PE-Foxp3)(美國Biolegend公司);7900HTFAST實時聚合酶鏈反應(PCR)儀(愛普拜斯應用生物系統貿易上海有限公司);FACSCalibur流式細胞儀(美國BD公司)。
1.2 實驗動物分組、EAU模型建立及T細胞分離
健康雌性C57BL/6J小鼠12只,鼠齡8~10周,體重約20 g,無特定病原體級(北京維通利華實驗動物技術有限公司)。實驗前排除眼部疾病及其他異常。飼養環境及實驗操作符合國家科學技術委員會《實驗動物管理條例》規定,并獲得天津醫科大學動物管理及使用委員會批準(批準號:TJYY2019110117)。
采用隨機數字表法將小鼠分為LV-Ctrl組、LV-IL-23R組,每組各為6只。小鼠尾靜脈分別注射200 μl滴度為1×108 TU/ml的對照慢病毒或IL-23R過表達慢病毒[15-16]。注射后7 d,兩組小鼠腹腔注射800 ng百日咳毒素,于小鼠單后足和脊柱兩側皮下注射含有200 μg IRBP1-20、0.8 mg結核分枝桿菌H37RA和不完全弗氏佐劑的乳化劑,建立EAU模型,免疫當天記作0 d。免疫后30 d,取小鼠脾臟和淋巴結研磨并過濾,將濾液加入尼龍柱密封,37 ℃培養1 h,完全培養基沖洗尼龍柱,得到T細胞懸液。
1.3 小鼠視網膜炎癥臨床觀察及組織病理學檢查
免疫后13 d開始,每2天行間接檢眼鏡檢查,參照Caspi[17]評分標準對炎癥反應程度進行評分。免疫后30 d,深度麻醉處死小鼠,摘除眼球作石蠟病理切片,沿視盤矢狀面制作5 μm厚度切片,蘇木精-伊紅染色,光學顯微鏡下觀察視網膜病變情況。參照Caspi[17]評分標準進行組織病理學評分。
1.4 實時定量PCR(qRT-PCR)檢測小鼠脾臟中IL-23R及T細胞中IL-17、維甲酸相關孤兒受體γt(RORγt)、IL-10和Foxp3 mRNA相對表達量
分離各組小鼠脾臟后剪取部分脾臟組織研磨,提取脾臟總RNA;提取各組小鼠T細胞總RNA;將RNA逆轉錄合成cDNA,以磷酸甘油醛脫氫酶為內參照。采用Premier 5.0軟件設計正向、反向引物(表1)。反應體系:SYBR Green 2× Master Mix 4 μl,正反向引物各1 μl,cDNA模板2 μl;反應條件:95 ℃預變性10 min,95 ℃變性15 s,60 ℃退火及延伸1 min,40個循環。相對表達式計算使用相對量化方程2?ΔΔCt。

1.5 ELISA法檢測小鼠血清中IL-17水平
免疫后30 d,摘除各組小鼠眼球,收集靜脈血,離心后吸取上層血清。參照小鼠IL-17 ELISA試劑盒說明書操作,檢測各組小鼠血清中IL-17水平。
1.6 流式細胞儀檢測Th17、Treg細胞比率
Treg細胞檢測:T細胞中加入破膜固定液,4 ℃避光過夜;TruStainFcX? PLUS封閉細胞表面Fc受體,加入FITC-CD4和PE-Foxp3抗體,4 ℃避光孵育2 h染色。Th17細胞檢測:T細胞與經射線處理的抗原提呈細胞共培養,加入10 mg/ml IRBP1-20和10 ng/ml IL-23刺激,8 d后收集共培養細胞,于含有50 ng/ml PMA、1 μg/ml BFA和1 μg/ml鈣離子霉素的培養基中刺激4~6 h,破膜固定,封閉,FITC-IL-17和PE-CD4抗體標記。
1.7 統計學方法
采用SPSS26.0軟件行統計學分析。正態分布的計量資料以均數±標準差()表示,偏態分布的計量資料以M(IQR)表示。采用Shapiro-Wilk檢驗數據正態性,組間均數以Levene檢驗方差齊性。組間差異比較采用獨立樣本t檢驗、獨立樣本Mann-Whitney U檢驗或重復測量方差分析。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
qRT-PCR結果顯示,LV-Ctrl組、LV-IL-23R組小鼠脾臟中IL-23R mRNA相對表達量分別為1.00(1.00)、9.87(2.79);LV-IL-23R組小鼠IL-23R mRNA相對表達量顯著升高,差異有統計學意義(Z=2.087,P=0.037)。
LV-Ctrl組,免疫后13~15 d,視網膜血管輕微炎癥和視盤水腫;17~21 d,疾病逐漸加重,血管擴張,周圍可見白色滲出,視網膜彌漫性點狀浸潤,21 d炎癥達到高峰;22~29 d,炎癥逐漸緩解至基本消退。LV-IL-23R組,視網膜血管紆曲、擴張伴血管鞘,視網膜大面積水腫,點狀浸潤增多并形成大量線狀炎性浸潤灶。免疫后13 d,LV-IL-23R組、LV-Ctrl組小鼠眼底炎癥評分差異無統計學意義(t=-2.001,P=0.058);免疫后15~29 d,LV-IL-23R組小鼠眼底炎癥評分均高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-4.429、-6.578、-7.768、-10.183、-6.325、-7.304、-4.841、-6.872,P<0.001)(圖1)。

光學顯微鏡觀察結果顯示,LV-Ctrl組視網膜和玻璃體內可見明顯炎性細胞浸潤,視網膜整體增厚,局部可見輕微皺褶。LV-IL-23R組,大量炎性細胞浸潤、視網膜血管炎及視網膜全層受損,視網膜各層結構松散,可見廣泛視網膜皺褶(圖2A,2B)。LV-IL-23R組小鼠視網膜組織病理學評分明顯高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-4.339,P=0.001)(圖2C)。

ELISA檢測結果顯示,LV-IL-23R組、LV-Ctrl組小鼠血清中IL-17濃度分別為(226.03±37.79)、(104.09±24.38)pg/ml;LV-IL-23R組明顯高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-5.423,P=0.002)。
流式細胞儀檢測結果顯示,LV-IL-23R組CD4+IL-17+T細胞比例明顯高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-4.290,P=0.002)(圖3);LV-IL-23R組小鼠脾臟和淋巴結細胞中CD4+Foxp3+ T細胞比例較LV-Ctrl組顯著降低,差異有統計學意義(t=3.700,P=0.006)(圖4)。


qRT-PCR檢測結果顯示,與LV-Ctrl組比較,LV-IL-23R組小鼠T細胞中IL-17、RORγt mRNA相對表達量顯著增加,IL-10、Foxp3 mRNA相對表達量降低,差異均有統計學意義(t=-6.313、-5.922、4.844、7.572,P=0.003、0.004、0.008、0.002)(圖5)。

3 討論
Th17細胞是自身免疫性葡萄膜炎的主要致病細胞群[4],通過分泌IL-17等炎性因子,破壞血視網膜屏障并招募其他炎性細胞進入視網膜,引起視網膜和脈絡膜的炎癥反應[4,18-20]。我們既往研究發現,在Th17細胞中過表達IL-23R可增強致病性Th17相關基因的表達和IL-17的分泌[21],表明IL-23R對IRBP特異性Th17細胞反應具有促進作用,提示IL-23R可能與EAU的發生發展密切相關。大量研究表明,IL-23R參與多種自身免疫性疾病的發生和發展[22-26],但其對自身免疫性葡萄膜炎的作用尚不明確。鑒于慢病毒載體高感染效率,低免疫原性和穩定表達的特點[27-28],本研究選擇慢病毒介導IL-23R在EAU小鼠體內過表達,在此基礎上觀察IL-23R過表達對EAU發生發展的影響,初步探究其發揮作用的細胞學機制。
本研究結果顯示,LV-IL-23R感染可顯著增加EAU小鼠脾臟中IL-23R mRNA相對表達量,表明IL-23R在小鼠體內成功過表達,且明顯加重EAU小鼠視網膜炎癥反應,不同時期的EAU臨床評分均顯著升高;視網膜組織病理學觀察發現,IL-23R過表達明顯加重視網膜的組織病理學損傷。上述結果證明IL-23R過表達能夠促進EAU進展。Lee等[29]發現,IL-23R-/-小鼠對實驗性腦脊髓膜炎的易感性降低,其脊髓實質和腦膜中未見炎性浸潤灶;而在炎性腸病、系統性紅斑狼瘡(SLE)等其他自身免疫性疾病的動物模型中,敲除IL-23R基因同樣能緩解炎癥反應[11,30],與本研究結論一致。
為進一步明確IL-23R在EAU中的作用機制,我們觀察了兩組小鼠Th17細胞和Treg細胞的變化。結果顯示,IL-23R過表達顯著上調小鼠脾臟和淋巴結中的Th17細胞比例,下調Treg細胞比例;同時,LV-IL-23R組小鼠T細胞中IL-17和RORγt mRNA相對表達量增加,IL-10、Foxp3 mRNA相對表達量降低,表明IL-23R過表達促進Th17細胞反應,同時抑制Treg細胞反應;另外,本研究檢測了小鼠血清中IL-17水平,結果顯示,IL-23R過表達能夠促進EAU小鼠體內IL-17分泌。上述結果提示,IL-23R過表達可破壞EAU小鼠的Th17/Treg平衡,使其向Th17方向偏移。與本結果相似,Dai等[30]、Schmidt等[31]研究發現,在SLE模型中,IL-23R-/-小鼠的腎炎癥狀明顯緩解,脾臟、淋巴結細胞中Treg細胞比例升高而Th17細胞比例下降,且相比直接中和IL-17A,阻斷IL-23/IL-23R通路能更有效地緩解狼瘡性腎炎,表明除參與Th17細胞反應外,IL-23R亦可調控Treg細胞,通過影響Th17/Treg平衡在SLE的炎癥反應中發揮關鍵作用。IL-23R對Th17/Treg平衡的調控機制較為復雜。文獻報道,在炎性腸病小鼠模型中,IL-23R可通過上調T細胞中的血清和糖皮質激素誘導激酶1,促進Th17細胞反應,抑制Treg細胞極化和功能[32];而在SLE小鼠中,IL-23/IL-23R通過下調T細胞核中核因子-kB p65的表達抑制IL-2分泌,IL-2水平的降低進一步阻礙Treg細胞的分化,從而干擾Th17/Treg平衡[30]。然而IL-23R在EAU中調控Th17/Treg平衡的分子機制尚不明確,有待進一步研究。
本研究存在的不足是,通過不同時期眼底臨床觀察明確IL-23R對EAU疾病發生發展的影響,但缺乏對各組小鼠視網膜組織病理學的動態評估,應做進一步探索以完善研究。
自身免疫性葡萄膜炎是一種常見的致盲性眼病,其病因及發病機制尚不完全明確[1]。CD4+T細胞在自身免疫性葡萄膜炎中發揮主導作用,其中,輔助性T細胞17(Th17)通過分泌白細胞介素(IL)-17等多種炎性因子,調節固有免疫和適應性免疫反應,是自身免疫性葡萄膜炎的主要致病細胞群[2-4];而調節性T細胞(Treg)特異性表達叉頭狀轉錄因子p3(Foxp3),主要分泌IL-10等抑炎因子,抑制機體對自身抗原的免疫反應[5-6]。研究證實,Th17細胞與Treg細胞的平衡是維持眼內免疫穩態的基礎,該平衡決定了自身免疫性葡萄膜炎的發展和轉歸[7-8]。目前研究認為,IL-23是維持Th17細胞穩定性和致病性的關鍵細胞因子[9-10],IL-23與Th17細胞表面的IL-23受體(IL-23R)結合,促進Th17細胞分泌IL-17、粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子等炎性因子[4]。研究發現,IL-23R/IL-17軸在自身免疫性關節炎、炎性腸病等多種自身免疫性疾病中發揮致病作用[11-12];在Vogt-Koyanagi-Harada綜合征患者的外周血單個核細胞中,IL-23R的表達水平顯著升高[13],提示IL-23R可能參與了自身免疫性葡萄膜炎的發生和發展。但IL-23R對自身免疫性葡萄膜炎的具體作用及機制尚不明確。因此,本研究以實驗性自身免疫性葡萄膜炎(EAU)為研究對象[14],采用慢病毒介導IL-23R過表達,初步探討IL-23R對EAU疾病進程的影響和對Th17/Treg平衡的調控作用。現將結果報道如下。
1 材料和方法
1.1 主要材料
人胚胎腎細胞系293T(美國ATCC細胞庫);IL-23R過表達質粒pReceiver-Lv201-IL-23R及其對照質粒(美國Gene-Copoeia公司);輔助包裝質粒pSPAX2和pMD2.G(美國Addgene公司);LipoFiterTM (上海漢恒生物有限公司);聚乙二醇8000、Dulbecco改良Eagle培養基(美國Gibco公司);光感受器間維生素A類結合蛋白1-20(IRBP1-20)多肽片段(上海生物工程股份有限公司合成);結核分枝桿菌H37RA(美國Difco公司);百日咳毒素、弗氏不完全佐劑(美國Sigma公司);RPMI1640培養基、胎牛血清(美國Hyclone公司);小鼠IL-17酶聯免疫吸附測定(ELISA)試劑盒、重組鼠IL-23蛋白(美國R&D公司);RNA提取試劑盒(美國EZBioscience公司);逆轉錄試劑盒、SYBR Green 2× Master Mix(美國Thermo公司);佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯(PMA)、布雷菲爾得菌素A(BFA)、鈣離子霉素(美國Sigma公司);固定劑、破膜劑、TruStain FcX? PLUS封閉劑、異硫氰酸熒光素(FITC)標記的抗小鼠IL-17流式抗體(FITC-IL-17)、巰基化藻紅蛋白(PE)標記的抗小鼠CD4流式抗體(PE-CD4),FITC標記的抗小鼠CD4流式抗體(FITC-CD4)、PE標記的抗小鼠Foxp3流式抗體(PE-Foxp3)(美國Biolegend公司);7900HTFAST實時聚合酶鏈反應(PCR)儀(愛普拜斯應用生物系統貿易上海有限公司);FACSCalibur流式細胞儀(美國BD公司)。
1.2 實驗動物分組、EAU模型建立及T細胞分離
健康雌性C57BL/6J小鼠12只,鼠齡8~10周,體重約20 g,無特定病原體級(北京維通利華實驗動物技術有限公司)。實驗前排除眼部疾病及其他異常。飼養環境及實驗操作符合國家科學技術委員會《實驗動物管理條例》規定,并獲得天津醫科大學動物管理及使用委員會批準(批準號:TJYY2019110117)。
采用隨機數字表法將小鼠分為LV-Ctrl組、LV-IL-23R組,每組各為6只。小鼠尾靜脈分別注射200 μl滴度為1×108 TU/ml的對照慢病毒或IL-23R過表達慢病毒[15-16]。注射后7 d,兩組小鼠腹腔注射800 ng百日咳毒素,于小鼠單后足和脊柱兩側皮下注射含有200 μg IRBP1-20、0.8 mg結核分枝桿菌H37RA和不完全弗氏佐劑的乳化劑,建立EAU模型,免疫當天記作0 d。免疫后30 d,取小鼠脾臟和淋巴結研磨并過濾,將濾液加入尼龍柱密封,37 ℃培養1 h,完全培養基沖洗尼龍柱,得到T細胞懸液。
1.3 小鼠視網膜炎癥臨床觀察及組織病理學檢查
免疫后13 d開始,每2天行間接檢眼鏡檢查,參照Caspi[17]評分標準對炎癥反應程度進行評分。免疫后30 d,深度麻醉處死小鼠,摘除眼球作石蠟病理切片,沿視盤矢狀面制作5 μm厚度切片,蘇木精-伊紅染色,光學顯微鏡下觀察視網膜病變情況。參照Caspi[17]評分標準進行組織病理學評分。
1.4 實時定量PCR(qRT-PCR)檢測小鼠脾臟中IL-23R及T細胞中IL-17、維甲酸相關孤兒受體γt(RORγt)、IL-10和Foxp3 mRNA相對表達量
分離各組小鼠脾臟后剪取部分脾臟組織研磨,提取脾臟總RNA;提取各組小鼠T細胞總RNA;將RNA逆轉錄合成cDNA,以磷酸甘油醛脫氫酶為內參照。采用Premier 5.0軟件設計正向、反向引物(表1)。反應體系:SYBR Green 2× Master Mix 4 μl,正反向引物各1 μl,cDNA模板2 μl;反應條件:95 ℃預變性10 min,95 ℃變性15 s,60 ℃退火及延伸1 min,40個循環。相對表達式計算使用相對量化方程2?ΔΔCt。

1.5 ELISA法檢測小鼠血清中IL-17水平
免疫后30 d,摘除各組小鼠眼球,收集靜脈血,離心后吸取上層血清。參照小鼠IL-17 ELISA試劑盒說明書操作,檢測各組小鼠血清中IL-17水平。
1.6 流式細胞儀檢測Th17、Treg細胞比率
Treg細胞檢測:T細胞中加入破膜固定液,4 ℃避光過夜;TruStainFcX? PLUS封閉細胞表面Fc受體,加入FITC-CD4和PE-Foxp3抗體,4 ℃避光孵育2 h染色。Th17細胞檢測:T細胞與經射線處理的抗原提呈細胞共培養,加入10 mg/ml IRBP1-20和10 ng/ml IL-23刺激,8 d后收集共培養細胞,于含有50 ng/ml PMA、1 μg/ml BFA和1 μg/ml鈣離子霉素的培養基中刺激4~6 h,破膜固定,封閉,FITC-IL-17和PE-CD4抗體標記。
1.7 統計學方法
采用SPSS26.0軟件行統計學分析。正態分布的計量資料以均數±標準差()表示,偏態分布的計量資料以M(IQR)表示。采用Shapiro-Wilk檢驗數據正態性,組間均數以Levene檢驗方差齊性。組間差異比較采用獨立樣本t檢驗、獨立樣本Mann-Whitney U檢驗或重復測量方差分析。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
qRT-PCR結果顯示,LV-Ctrl組、LV-IL-23R組小鼠脾臟中IL-23R mRNA相對表達量分別為1.00(1.00)、9.87(2.79);LV-IL-23R組小鼠IL-23R mRNA相對表達量顯著升高,差異有統計學意義(Z=2.087,P=0.037)。
LV-Ctrl組,免疫后13~15 d,視網膜血管輕微炎癥和視盤水腫;17~21 d,疾病逐漸加重,血管擴張,周圍可見白色滲出,視網膜彌漫性點狀浸潤,21 d炎癥達到高峰;22~29 d,炎癥逐漸緩解至基本消退。LV-IL-23R組,視網膜血管紆曲、擴張伴血管鞘,視網膜大面積水腫,點狀浸潤增多并形成大量線狀炎性浸潤灶。免疫后13 d,LV-IL-23R組、LV-Ctrl組小鼠眼底炎癥評分差異無統計學意義(t=-2.001,P=0.058);免疫后15~29 d,LV-IL-23R組小鼠眼底炎癥評分均高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-4.429、-6.578、-7.768、-10.183、-6.325、-7.304、-4.841、-6.872,P<0.001)(圖1)。

光學顯微鏡觀察結果顯示,LV-Ctrl組視網膜和玻璃體內可見明顯炎性細胞浸潤,視網膜整體增厚,局部可見輕微皺褶。LV-IL-23R組,大量炎性細胞浸潤、視網膜血管炎及視網膜全層受損,視網膜各層結構松散,可見廣泛視網膜皺褶(圖2A,2B)。LV-IL-23R組小鼠視網膜組織病理學評分明顯高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-4.339,P=0.001)(圖2C)。

ELISA檢測結果顯示,LV-IL-23R組、LV-Ctrl組小鼠血清中IL-17濃度分別為(226.03±37.79)、(104.09±24.38)pg/ml;LV-IL-23R組明顯高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-5.423,P=0.002)。
流式細胞儀檢測結果顯示,LV-IL-23R組CD4+IL-17+T細胞比例明顯高于LV-Ctrl組,差異有統計學意義(t=-4.290,P=0.002)(圖3);LV-IL-23R組小鼠脾臟和淋巴結細胞中CD4+Foxp3+ T細胞比例較LV-Ctrl組顯著降低,差異有統計學意義(t=3.700,P=0.006)(圖4)。


qRT-PCR檢測結果顯示,與LV-Ctrl組比較,LV-IL-23R組小鼠T細胞中IL-17、RORγt mRNA相對表達量顯著增加,IL-10、Foxp3 mRNA相對表達量降低,差異均有統計學意義(t=-6.313、-5.922、4.844、7.572,P=0.003、0.004、0.008、0.002)(圖5)。

3 討論
Th17細胞是自身免疫性葡萄膜炎的主要致病細胞群[4],通過分泌IL-17等炎性因子,破壞血視網膜屏障并招募其他炎性細胞進入視網膜,引起視網膜和脈絡膜的炎癥反應[4,18-20]。我們既往研究發現,在Th17細胞中過表達IL-23R可增強致病性Th17相關基因的表達和IL-17的分泌[21],表明IL-23R對IRBP特異性Th17細胞反應具有促進作用,提示IL-23R可能與EAU的發生發展密切相關。大量研究表明,IL-23R參與多種自身免疫性疾病的發生和發展[22-26],但其對自身免疫性葡萄膜炎的作用尚不明確。鑒于慢病毒載體高感染效率,低免疫原性和穩定表達的特點[27-28],本研究選擇慢病毒介導IL-23R在EAU小鼠體內過表達,在此基礎上觀察IL-23R過表達對EAU發生發展的影響,初步探究其發揮作用的細胞學機制。
本研究結果顯示,LV-IL-23R感染可顯著增加EAU小鼠脾臟中IL-23R mRNA相對表達量,表明IL-23R在小鼠體內成功過表達,且明顯加重EAU小鼠視網膜炎癥反應,不同時期的EAU臨床評分均顯著升高;視網膜組織病理學觀察發現,IL-23R過表達明顯加重視網膜的組織病理學損傷。上述結果證明IL-23R過表達能夠促進EAU進展。Lee等[29]發現,IL-23R-/-小鼠對實驗性腦脊髓膜炎的易感性降低,其脊髓實質和腦膜中未見炎性浸潤灶;而在炎性腸病、系統性紅斑狼瘡(SLE)等其他自身免疫性疾病的動物模型中,敲除IL-23R基因同樣能緩解炎癥反應[11,30],與本研究結論一致。
為進一步明確IL-23R在EAU中的作用機制,我們觀察了兩組小鼠Th17細胞和Treg細胞的變化。結果顯示,IL-23R過表達顯著上調小鼠脾臟和淋巴結中的Th17細胞比例,下調Treg細胞比例;同時,LV-IL-23R組小鼠T細胞中IL-17和RORγt mRNA相對表達量增加,IL-10、Foxp3 mRNA相對表達量降低,表明IL-23R過表達促進Th17細胞反應,同時抑制Treg細胞反應;另外,本研究檢測了小鼠血清中IL-17水平,結果顯示,IL-23R過表達能夠促進EAU小鼠體內IL-17分泌。上述結果提示,IL-23R過表達可破壞EAU小鼠的Th17/Treg平衡,使其向Th17方向偏移。與本結果相似,Dai等[30]、Schmidt等[31]研究發現,在SLE模型中,IL-23R-/-小鼠的腎炎癥狀明顯緩解,脾臟、淋巴結細胞中Treg細胞比例升高而Th17細胞比例下降,且相比直接中和IL-17A,阻斷IL-23/IL-23R通路能更有效地緩解狼瘡性腎炎,表明除參與Th17細胞反應外,IL-23R亦可調控Treg細胞,通過影響Th17/Treg平衡在SLE的炎癥反應中發揮關鍵作用。IL-23R對Th17/Treg平衡的調控機制較為復雜。文獻報道,在炎性腸病小鼠模型中,IL-23R可通過上調T細胞中的血清和糖皮質激素誘導激酶1,促進Th17細胞反應,抑制Treg細胞極化和功能[32];而在SLE小鼠中,IL-23/IL-23R通過下調T細胞核中核因子-kB p65的表達抑制IL-2分泌,IL-2水平的降低進一步阻礙Treg細胞的分化,從而干擾Th17/Treg平衡[30]。然而IL-23R在EAU中調控Th17/Treg平衡的分子機制尚不明確,有待進一步研究。
本研究存在的不足是,通過不同時期眼底臨床觀察明確IL-23R對EAU疾病發生發展的影響,但缺乏對各組小鼠視網膜組織病理學的動態評估,應做進一步探索以完善研究。